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O protocolo de estudo animal foi aprovado pelo Comitê Institucional de Cuidado e Uso Animal da Universidade Médica de Chongqing (IACUC-CQMU-2025-10073).
Preparação de fração enriquecida com lactona sesquiterpeno (SLEL)
Materiais medicinais secos de Eupatorium lindleyanum DC. foram pulverizados e submetidos à extração por refluxo 2x com etanol de 70% (v/v) sob pressão reduzida. Cada extração foi realizada com uma relação solvente-material de 10:1 (v/w) durante 2 horas. Os extratos combinados eram filtrados, concentrados sob pressão reduzida a ≤60 °C e, posteriormente, liofilizados a vácuo para obter o pó de extrato de etanol bruto.
O extrato seco foi totalmente dissolvido em água destilada (concentração final: 100 mg/mL) e submetido sequencialmente a cromatografia em resina de poliamida, seguida pela cromatografia de resina por adsorção macroporosa D101 para enriquecer lactonas sesquiterpenas. Após o equilíbrio de adsorção, a resina D101 era lavada com água destilada para remover impurezas polares e então eluída com etanol anidro. Após a elução do etanol, a fração coletada era concentrada sob pressão reduzida e submetida à liofilização para produzir a fração SLEL, que era armazenada a −20 °C até o uso.
A separação foi alcançada em uma plataforma UPLC que emprega um sistema binário de fase móvel de acetonitrila e 0,1% (v/v) de ácido fórmico em água. O programa de gradiente compreendia uma pausa isocrática inicial de 25 minutos com baixo conteúdo orgânico, uma rampa linear curta para 70% acetonitrila, uma fase de alto escalão orgânico a 90% acetonitrila e uma etapa final de equilíbrio retornando às condições iniciais. O sistema operava a 0,25 mL·min⁻1 com temperatura de coluna de 35 °C e volume de injeção de 0,1 μL (Figura Suplementar S1).
Animais
Um total de 36 ratos machos de Sprague–Dawley (200 ± 20 g) e 36 ratos BALB/c machos (20 ± 2 g) foram usados neste estudo. Os animais eram alojados em condições padronizadas (22 ± 2 °C, 55 ± 5% de umidade, 12 horas de ciclo claro/escuro) com livre acesso a alimento e água. Os animais foram aclimatados por 7 dias antes da experimentação e monitorados diariamente quanto à saúde geral. Todos os procedimentos foram realizados para minimizar o sofrimento animal, e a anestesia foi aplicada antes da coleta de sangue e coleta de tecidos.
Edema auricular induzido por xileno em camundongos
O modelo de edema da orelha do camundongo foi estabelecido conforme descritoanteriormente 9. Após a aclimatação, os camundongos foram aleatoriamente divididos em seis grupos (n = 6 por grupo): controle (CG), modelo (MG), dexametasona (DEX, 10 mg/kg) e SLEL em baixa dose (75 mg/kg), média (150 mg/kg) e alta dose (300 mg/kg). Todos os tratamentos foram administrados por gavage oral uma vez ao dia por 7 dias consecutivos (volume final de dosagem: 10 mL/kg). Em 1,5 h após a administração final, a inflamação foi induzida aplicando 30 μL de xileno de forma uniforme em ambas as superfícies do ouvido direito, exceto no grupo controle. Trinta minutos depois, os camundongos foram anestesiados, amostras de sangue coletadas e punções circulares de 8 mm nas orelhas foram obtidas a partir de posições anatômicas idênticas de ambas as orelhas.
Edema das patas induzido por carrageniana em ratos
O modelo de edema da pata de rato foi estabelecido usando carragenina, conforme descritoanteriormente 10. Os ratos foram aleatoriamente distribuídos em seis grupos (n = 6 por grupo): CG, MG, DEX (5 mg/kg) e SLEL de baixa dose (50 mg/kg), média dose (100 mg/kg) e alta dose (200 mg/kg). Os tratamentos foram administrados por via oral uma vez ao dia durante 7 dias (10 mL/kg). Os volumes basais das patas foram medidos antes da dosagem final. Trinta minutos após a última administração, 0,1 mL de solução de carragenina a 1% (p/v) foram injetados subcutâneamente na superfície plantar da pata traseira direita. Os volumes das patas foram medidos em 1, 2, 3 e 4 horas após a injeção usando um pletismômetro. O edema das patas foi calculado como:
Edema das patas (%) = (Vt − V0) / V0 × 100%
Exame histológico
Os tecidos do ouvido e das patas foram coletados imediatamente após as avaliações funcionais. Os tecidos foram fixados em formalina tamponada com 10% de neutro por 72 horas em temperatura ambiente, embutidos em parafina, seccionados (5 μm) e corados com H&E conforme os protocolospadrão 11.
Ensaio imunossorvente ligado a enzimas (ELISA)
As amostras de soro foram obtidas por centrifugação a 3.000 × g por 10 minutos a 4 °C. Os níveis de TNF-α, IL-6 e IL-1β foram quantificados usando kits ELISA comercialmente disponíveis, de acordo com protocolos padrão.
Análise do Western blot
Extratos totais de proteína foram preparados a partir de tecidos de ouvido e patas usando o tampão de lise RIPA suplementado com inibidores de protease e fosfatase. As concentrações de proteína foram quantificadas usando um ensaio de BCA, e quantidades iguais de proteína (30 μg por amostra) foram resolvidas por SDS-PAGE e transferidas para as membranas do PVDF. As membranas foram bloqueadas com leite desnatado a 5% por 1 hora em temperatura ambiente, seguidas por incubação com anticorpos primários a 4 °C durante a noite e anticorpos secundários conjugados com HRP por 1 hora em temperatura ambiente. Bandas imunorreativas foram detectadas usando quimioluminescência aprimorada e quantificadas com o software ImageJ.
PCR quantitativa em tempo real (qRT-PCR)
O RNA total foi isolado dos tecidos do ouvido e das patas usando o reagente de extração de RNA listado na Tabela de Materiais. Um micrograma de RNA total foi transcrito reversamente em cDNA usando um kit comercial de transcrição reversa, conforme as instruções do fabricante. A PCR quantitativa foi realizada usando química verde SYBR com primers específicos de genes (Tabela 1) em um volume de reação de 10 μL sob um protocolo de amplificação em duas etapas. Condições detalhadas de transcrição reversa e parâmetros de ciclo de PCR são fornecidos na seção de Protocolo. Os níveis relativos dos transcritos foram calculados usando o método 2⁻ΔΔCT , com o Gapdh usado como gene de referência interno.
Análise de dados e estatística
Os dados são expressos como média ± SD. Comparações estatísticas entre dois grupos foram realizadas usando o teste t de Student não pareado, enquanto ANOVA unidirecional foi aplicada para análises envolvendo mais de dois grupos. A significância estatística foi definida como p < 0,05. A significância é indicada como # p < 0,05 e ## p < 0,01 em comparação com o grupo controle (CG), e * p < 0,05 e ** p < 0,01 em relação ao grupo modelo (MG).