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Cinquenta ratos machos específicos de patógenos (FPS) de Sprague-Dawley (pesando entre 180 e 200 g) foram fornecidos pelo Centro Provincial de Controle e Prevenção de Doenças de Hubei (Academia Provincial de Medicina Preventiva de Hubei) (Wuhan, China; Certificado de Licença de Animal nº SCXK(JB) 2023-0005). Todos os procedimentos experimentais envolvendo animais foram conduzidos em estrita conformidade com o Guia dos Institutos Nacionais de Saúde para o Cuidado e Uso de Animais de Laboratório (8ª edição, 2011). O protocolo do estudo foi revisado e aprovado pelo Comitê de Ética Experimental de Animais da Tianjin Genink Biological Technology Co., Ltd. (Aprovação nº GENINK-20250074). Reagentes e equipamentos chave usados neste estudo estão listados na Tabela de Materiais que acompanha.
Cultura celular
A linhagem celular MH7A da artrite reumatoide humana (AR) foi cultivada no meio Modified Eagle Medium (DMEM) de Dulbecco, suplementado com 10% (v/v) de soro fetal bovino (FBS) e mantido a 37 °C em uma incubadora umidificada com 5% de CO₂17.
Animais e tratamentos
Os animais eram mantidos em uma instalação padrão livre de patógenos específicos (SPF) com um sistema de gaiola ventilada individualmente (IVC) sob condições ambientais estritamente controladas: temperatura climatizada de 21,0–25,0 °C, umidade relativa de 40–70%, fotoperíodo de 12 horas e renovação completa do ar 15 vezes por hora. Após um período de aclimatação de 7 dias, os ratos foram divididos aleatoriamente em seis grupos experimentais, com ratos adicionais reservados como reserva para circunstâncias imprevistas. Um modelo agudo de artrite inflamatória adjuvante (AA) foi induzido por injeção subcutânea de 100 μL de adjuvante de Freund completo (CFA; 10 mg·mL-1) na pata traseira direita18. Os grupos experimentais foram desenhados da seguinte forma: grupo controle em branco, grupo modelo AA, grupo controle positivo (metotrexato, 0,9 mg·kg-1)19 e três grupos de tratamento com smirnotina A administrados em níveis baixos (0,962 mg·kg-1), médios (1,923 mg·kg-1) e doses altas (3,846 mg·kg-1) baseados no valor IC₅₀.
Previsão de alvos de doenças e compostos
Com base na triagem preliminar de atividade realizada por nosso grupo de pesquisa, seis compostos que demonstraram bioatividade favorável foram selecionados para investigação: cinco alcaloides diterpenoides (Figura 3), benzoilaconina (1), 14-benzoil-8-O-metilaconina (2), (−)-(A-b)-14α-benzoiloxi-N-etil-13β, 15α-dihidroxi-1α,6α,8β,16β,18-pentametoxiaconitano (3), smirnotina A (4) e aconitina (5), juntamente com um derivado da cumarina, escopoletina (6)20. As notações simplificadas do sistema de entrada molecular de entrada de linha (SMILES) desses compostos foram recuperadas do banco de dados PubChem (https://pubchem.ncbi.nlm. nih.gov/) ou geradas usando o ChemDraw 18.0. Essas notações foram posteriormente importadas para o banco de dados SwissTargetPrediction (https://swisstargetprediction.ch/), com a espécie especificada como "Homo sapiens". Os alvos potenciais foram identificados selecionando genes com valor de probabilidade > 0, e os Nomes de Alvos e IDs UniProt correspondentes foramcoletados 21,22.
Redes PPI
Os genes-alvo sobrepostos foram analisados por uma rede de interação proteína-proteína (PPI) usando o banco de dados STRING (https://string-db.org/)23. Os dados resultantes, formatados em TSV, foram então importados para o Cytoscape 3.9.1 para visualização e análise adicionais. Os parâmetros topológicos da rede foram calculados usando o plugin Network Analyzer embutido. Na rede visualizada, o tamanho do nó e a intensidade da cor foram mapeados ao valor de grau, enquanto a espessura das bordas refletia a intensidade da interação entre os alvos. Os alvos centrais foram identificados e classificados com base no graude associação 24.
Análise de enriquecimento de vias da Ontologia Genética (GO) e da Enciclopédia de Genes e Genomas de Kyoto (KEGG)
Os alvos comuns foram submetidos ao banco de dados Metascape (https://metascape.org) para análises de enriquecimento de vias GOe KEGG 25. Os resultados funcionais foram visualizados usando a plataforma de bioinformática WeiShengXin (https://www.bioinformatics.com.cn).
A construção da rede dos "componentes ativos de medicamento-alvos-doenças-vias"
Componentes ativos e seus alvos correspondentes foram sistematicamente triados, seguidos por uma análise de enriquecimento funcional para identificar as principais vias de sinalização e seus alvos associados. Esses elementos foram posteriormente integrados usando o Cytoscape 3.9.1 para construir uma rede abrangente de "fármaco–componentes ativos–doença–alvos–vias". A análise topológica foi então realizada com a ferramenta Network Analyzer, na qual os nós eram classificados com base em parâmetros-chave, incluindo Grau e Intermediedade, para identificar elementos centrais dentro da rede.
Acoplamento molecular de compostos-chave a alvos centrais
As estruturas tridimensionais das proteínas alvo centrais, incluindo ESR1 (9BQE), PTGS2 (5F19), EGFR (2XKN), GSK3B (5HLN), SRC (5MTJ) e ERBB2 (8U8X), foram recuperadas do Banco de Dados de Proteínas do RCSB (http://www.rcsb.org/; acessado em 7 de maio de 2025). Estruturas compostas foram construídas no ChemDraw (versão 18.0) e posteriormente convertidas para o formato SDF tridimensional usando o módulo integrado Chem3D. Os resultados do acoplamento molecular foram visualizados com PyMOL, e as afinidades de ligação foram avaliadas de acordo com a energia de interação (kcal·mol-1)26.
Ensaio de viabilidade celular
Células MH7A na fase de crescimento logarítmico foram semeadas em placas de 96 poços com uma densidade de 5 ×10 células 3 por poço. Ao atingir 80% de confluência, as células foram inicialmente tratadas com lipopolissacarídeo (LPS) (1 μg·mL-1) por 6 horas e depois expostas a diferentes concentrações de smirnotina A (5, 25, 50, 75 e 100 μg·mL-1). Cada grupo de tratamento foi montado em quadruplicado e incubado por 24 horas a 37 °C sob 5% de CO₂. Após a incubação, 100 μL de solução 10% de CCK8 foram adicionados a cada poço, seguidos por incubação adicional a 37 °C por 2 horas. A absorvância em 450 nm foi medida usando um leitor de microplaca.
Ensaio ELISA em células MH7A
O sobrenadante foi coletado por centrifugação a 2000 × g por 20 minutos a 4 °C. Os níveis de citocinas inflamatórias, incluindo IL-6, IL-1β, TNF-α e IL-10, foram quantificados no sobrenadante usando kits ELISA correspondentes, estritamente conforme as instruções do fabricante.
Medição do grau de inchaço dos dedos dos pés
O grau de inchaço da pata traseira direita foi avaliado medindo o volume da pata a cada 3 dias após a modelagem. As medições foram feitas duas vezes por rato e a média foi feita. A resposta inflamatória foi quantificada como o aumento percentual do volume das patas em relação ao valor inicial.

Medição do índice de órgãos
Todos os ratos foram anestesiados e eutanasiados 24 horas após a administração final. O método humanitário reconhecido pela comunidade veterinária internacional é adotado. Primeiro, uma alta concentração (5%) de isoflurano é usada para anestesiar profundamente o animal. Quando perde a consciência e todos os reflexos, o peito é aberto e o coração é cortado, garantindo que o animal morra sem dor e sem qualquer sensação. O baço e o timo foram prontamente excisados e pesados. Após a lavagem com soro fisiológico, o excesso de umidade nas superfícies dos tecidos foi removido por aplicação com papel filtrante, e os peso úmido dos órgãos foramregistrados em 27,28.

Hematoxilina e eosina (HE)
Para preservar a integridade das amostras de tecido da pata, toda a porção distal à articulação do tornozelo direito de cada rato foi coletada e armazenada. Para seccionar, foi usado o tecido inchado das patas. O procedimento de amostragem foi o seguinte: o tecido aproximadamente 1 cm acima da articulação do tornozelo direito foi completamente dissecado, o pelo foi removido e o eixo ósseo foi cortado na extremidade proximal. A amostra foi imediatamente fixada em solução de paraformaldeído a 10%. Após a fixação, o tecido foi colocado em solução descalcificante de EDTA a 15%. A descalcificação era monitorada a cada 3 dias, e a solução era renovada conforme necessário até que o tecido amolecesse, indicando a conclusão da descalcificação. O tecido foi então desidratado por meio de uma série graduada de etanol (75% por 4 horas, 85% por 2 horas, 90% por 1,5 hora, 95% por 1 hora, e duas mudanças de 100% de etanol por 0,5 hora). As seções foram desparafinizadas, reidratadas com etanol, tingidas com hematoxilina por 10 minutos, enxaguadas com água da torneira, diferenciadas em ácido clorídrico–etanol por 10 segundos, enxaguadas com água da torneira, azuladas, novamente enxaguarias, imersas em etanol 85% por 5 minutos, contra-tingidas com eosina por 5 minutos, enxaguadas com água da torneira por 3 segundos, desidratadas, limpas e montadas paraobservação 29.
Ensaio ELISA do soro de rato
Amostras de sangue foram centrifugadas a 2000 × g por 20 minutos a 4 °C, e o sobrenadante resultante foi coletado para análise de citocinas. As concentrações de IL-1β, IL-6 e TNF-α foram determinadas usando kits ELISA comerciais, estritamente de acordo com os protocolos do fabricante. Uma curva padrão foi gerada e ajustada usando o software cvxpt32, e os níveis de expressão de cada citocina foram calculados interpolando os valores de absorção na equação correspondente da curva padrão. As concentrações finais de proteínas foram calculadas a partir das medições experimentais reais.
Análise quantitativa de reação em cadeia da polimerase (qPCR)
O RNA total foi isolado de células sinoviais usando o reagente TRIzol, com separação de fases alcançada pela adiçãode clorofórmio 30. Um kit comercial de transcrição reversa foi então empregado para sintetizar cDNA a partir do RNA isolado, seguindo rigorosamente as instruções do fabricante. qRT-PCR foi realizada usando um reagente SYBR Premix. Gliceraldeído-3-fosfato desidrogenase (GAPDH) foi usada como gene de referência endógeno, e os níveis relativos de expressão gênica foram calculados usando o método 2-ΔΔCt . As seguintes sequências de espoletas foram usadas: GAPDH Forward: ACAGCACAGGGTGTGGGGAC, e GAPDH Reverse: TTTGAGGGTGCAGCGAACTT; IL-17A Frente: CTGATGCTGTTGCTGCTGCTACTGA, e IL-17A Reverso: TGGAACGGTTGAGGTAGTCTGA; TRAF6 Frente: ACATTTCCCTCTTTGTCCACACAC, e TRAF6 Reverso: TTAGCATCCATGACCTCTTCGT; IL-10 Frente: CTGCAGGACTTTAAGGGTTACTT, e IL-10 Reverso: CTTGCTTTTTTCTCACAGGGA; IL-1β Frente: CCTGTGTGATGAAAGACGGC, e IL-1β Reverso: TATGTCCCGACCATTGCTGT; IL-6 Frente: GTTGCCTTCTTGGGACTGATG, e IL-6 Ré: TACTGGTCTGTTGTGGGTGGT.
Extração de proteínas e western blot
O tecido sinovial foi lisado em tampão de radioimunoprecipitação (RIPA) suplementado com fosfatase/inibidor de protease, e as concentrações de proteína foram medidas com um kit de ensaio de ácido bicinconínico (BCA). Para o Western bloting, lisados contendo quantidades iguais de proteína foram submetidos à eletroforese em gel de dodecilo sulfato de sódio-poliacrilamida (SDS-PAGE) e posteriormente transferidos para membranas de polivinideno fluoreto (PVDF). Após bloqueio com leite desnatado 5% em soro tampão Tris com 0,1% Tween (TBST) por 2 horas a 25 °C, as membranas foram incubadas durante a noite a 4 °C com anticorpos primários (GAPDH 1:50000; P-PI3K 1:1000; PI3K 1:1000; P-AKT 1:3000; AKT 1:6000). Após lavagem extensiva com TBST, as membranas foram reagidas com anticorpos secundários conjugados com peroxidase de raiz-forte (HRP) (Anti-Mouse IgG 1:10000; Anti-coelho IgG 1:1000) por 2 horas em temperatura ambiente. Após outra série de lavagens com TBST, as bandas proteicas foram visualizadas usando um substrato de quimioluminescência aprimorada (ECL). As intensidades das bandas foram quantificadas com o software ImageJ e normalizadas para GAPDH como controle de carga.
Análise estatística
Todos os dados foram analisados usando o software Graphpad Prism 9.5 e são apresentados como a média ±± desvio padrão. Comparações estatísticas foram realizadas usando ANOVA unidirecional quando apropriado. Um valor-p inferior a 0,05 foi considerado estatisticamente significativo. Comparado ao grupo de controle: *p < 0,05, **p < 0,01, p < 0,001 e p < 0,0001; Comparado ao grupo Modelo/LPS: #p < 0,05, ##p < 0,01, ###p < 0,001 e ####p < 0,0001.