Name: Quantificar Yeast Life Span cronológica por conseqüência de células envelhecidas (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2009-05-06T00:00:00.000+00:00
Duration: 12 min 24 s
Description: Aprenda a quantificar a vida útil cronológica de leveduras usando placas honeycomb e densidade óptica em alta vazão. Este método permite analisar a viabilidade celular ao longo do tempo em Saccharomyces cerevisiae.

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Este trabalho foi financiado pelo NIH Grant 1R21AG031965-01A1. MK é um Ellison Medical Foundation Scholar novo no Envelhecimento.

Parte 1: Preparação das culturas de envelhecimento <ol><li> Cepas raia de interesse dos estoques congelados em placas de ágar YEPD (extrato de levedura 1%, 2% Bacto-peptona, agar 2%, 2% de glicose). </li><li> Incubar as células em 30 ˚ C durante 48 horas ou até colônias única aparecer. </li><li> Escolha colônias única e inocular em 5 mL de meio líquido YEPD (extrato de levedura 1%, 2% Bacto-peptona, 2% de glicose) em tubos de ensaio. </li><li> Crescer culturas durante a noite a 30 ˚ C, mantendo agitação constante utilizando um shaker ou tambor do rolo. </li><li> Inocular 5 mL de meio sintético (SC) completa (Tabela 1) com 50 mL da cultura durante a noite. Geralmente três culturas SC estão preparados para cada cepa para fornecer replicação triplicado biológica da análise de ciclo de vida de cada cepa sendo examinada. </li><li> Manter as culturas em 30 ˚ C com agitação constante em um monocilíndrico de todo o experimento (geralmente 2 ou mais semanas). </li></ol> Parte 2: Tomando um ponto de viabilidade idade Após dois dias de cultura em SC media, as células devem estar em fase estacionária e os primeiros anos de ponto está pronto para ser tomada. Subseqüentes idade pontos devem ser tomadas a cada 2-3 dias por um mínimo de duas semanas. Para cada ponto de idade: <ol><li> Prepare o Bioscreen 100 placas bem Honeycomb para inoculação preenchendo cada poço com 145 mL de YEPD. Certifique-se de deixar pelo menos um poço cheio de só YEPD e ausência de células para análise de dados mais tarde. </li><li> Remove as culturas de envelhecimento da incubadora. </li><li> Vortex brevemente a primeira cultura a ser inoculado na placa do favo de mel, tomando cuidado para não derramar da cultura. </li><li> Retire 5 mL da cultura mista e pipeta-lo no primeiro poço da placa do favo de mel. Chama boca de cada tubo de ensaio, antes e após a remoção da alíquota 5 mL. </li><li> Repita esse procedimento para cada cultura de envelhecimento sendo certo anotar a posição bem correspondentes a cada cultura. Idênticas posições bem deve ser usado para cada idade subseqüentes ponto durante todo o experimento. </li><li> Substituir as culturas para a 30 ˚ C incubadora quando terminar com a vacinação. </li></ol> Parte 3: Carregando o Bioscreen C máquina MBR <ol><li> Expor o compartimento incubadora, levantando a tampa e retire a tampa para a bandeja de amostra. </li><li> Inserir a placa recém-inoculados Honeycomb na bandeja de amostra (usar o slot da esquerda se você estiver apenas uma leitura da placa). </li><li> Recoloque a tampa para a bandeja de amostra e menor a tampa do compartimento de incubadora. </li><li> Verifique se o fluido de transferência de calor está acima do nível mínimo de preenchimento. Se baixo, adicionar mais usando uma pipeta de 1000 mL com o fluido de transferência de calor fornecido. </li><li> Usando o software Bioscreen &quot;EZExperiment&quot;, defina os parâmetros a seguir para obter as curvas de crescimento adequado para Saccharomyces cerevisiae: <ul><li> Número de amostras: Digite o número de poços com a mídia ou 200 </li><li> Filter: 420-580nm, Wideband </li><li> Temperatura: 30 ˚ C </li><li> Comprimento experimento: um dia, 0 horas, 0 segundos </li><li> Intervalo de medição: 30 minutos </li><li> Agitação: On, agitação contínua, de alta </li></ul></li><li> Clique em &quot;Iniciar&quot; para iniciar as leituras. </li></ol> Parte 4: Análise de Dados Tipicamente, seis idade pontos são tomadas ao longo de duas semanas. Os pontos de idade são tomadas nos dias 2, 4, 6, 9, 11 e 13. Dependendo do desenho experimental e tensões que está sendo testado, pode ser desejável para tomar idade pontos mais ou menos freqüentemente ou por mais de duas semanas. É importante carregar a placa do favo de mel na mesma ordem para todas as idades ponto tal que cada cultura envelhecimento corresponde à mesma posição em todas as idades bem-ponto, pois isso fará com que a análise de dados muito mais fácil. <ol><li> Obter os arquivos de saída da máquina Bioscreen MBR C. O software &quot;EZExperiment&quot; irá mostrar os dados Bioscreen como um arquivo delimitado por tabulação que é compatível com Microsoft Excel, assim como outros softwares. A primeira coluna mostra em que momento da medição OD foi tomada durante o experimento, com colunas subseqüentes representando cada poço nas placas Bioscreen Honeycomb (Figura 1). </li><li> Excluir a leitura OD primeiro de cada coluna. Esta leitura é &quot;ruído&quot;. </li><li> Normalizar os dados, subtraindo o valor da OD bem com YEPD sozinho de todos os valores de OD em cada coluna. Isso remove a absorvância de fundo pela mídia. </li><li> Plot as curvas conseqüência. As curvas mudará em função da idade (Figura 2). Por exemplo, traçando as curvas de crescimento da coluna 1 (poço 1 da placa do favo de mel) ao longo dos seis pontos do tempo, há uma nítida mudança para a direita das curvas ao longo do tempo. </li><li> Calcular o tempo de duplicação (δ) para cada poço com base na cinética de crescimento de dois dias a idade-ponto. A equação utilizada para calcular tempo de duplicação is: <img src="/files/ftp_upload/1156/equat.png" alt="Equação" /> onde OD 1 e 2 representam OD OD medições sucessivas e t 1 e t 2 é o tempo entre as medições. Calcule duplicação vezes apenas entre os valores OD de 0,2 para 0,5. A média desses valores é o tempo de duplicação para o bem. Calcule duplicação vezes apenas entre os valores OD de 0,2 para 0,5. A média desses valores é o tempo de duplicação para o bem. A maioria das estirpes do tipo selvagem levedura deve dar um valor de tempo de duplicação entre 85 a 90 minutos. </li><li> Para cada idade ponto, calcular a mudança de tempo (Dt) nas curvas de crescimento em relação à idade inicial de ponto (dia 2). Uma maneira fácil de fazer isso é determinar a diferença na duração do tempo que levou para cada poço para chegar a um OD de 0,3 entre os anos iniciais de ponto e cada subseqüente idade ponto. O tempo que um determinado poço atingiu uma OD de 0,3 pode ser calculado a partir da equação de regressão linear correspondente a ln (OD) em função do tempo entre os dois pontos temporais bracketing OD = 0,3. </li><li> Calcular a fração sobrevivente em cada idade ponto, a fim de gerar uma curva de sobrevivência (Figura 3). Definir o ponto inicial idade (dia 2) a ser viabilidade de 100%. Para cada idade sucessiva ponto-calcular a sobrevivência por cento usando a equação: <img src="/files/ftp_upload/1156/equat2.png" alt="Equação segunda" width="245" height="115" /> s onde n é a porcentagem de sobrevivência, Dt n é a mudança da hora, e n δ é o tempo de duplicação. </li><li> Gerar curvas de sobrevida (Figura 3B), como desejado para cada bem (ou poços replicar) traçando a fração (ou percentual) de células viáveis ​​em função da idade. </li><li> Calcular a sobrevivência integral (SI) para cada poço. SI é definida como a área sob a curva de sobrevivência e pode ser estimado pela fórmula: <img src="/files/ftp_upload/1156/equat3.png" alt="Equação 3" width="400" height="79" /> onde a idade n é a idade-ponto (eg 2, 4, 6, 9, 11 e 13) e s n é o valor de sobrevivência nessa idade ponto. </li><li> Determinar os parâmetros estatísticos de poços replicar a partir dos dados do SI e sobrevivência. Comum parâmetros estatísticos de interesse incluem mediana, média e variância para cada conjunto de fatores biológicos repetições. A t-teste ou análise similar pode ser usado para comparação de pares de SI para fins experimentais e grupos controle. Também pode ser desejável para gerar curvas de sobrevivência, como descrito em 4.8 de média biológica repetições. </li></ol> Parte 5: Os resultados representativos Ao término do experimento, você terá traçado da curva de sobrevivência e realizada a análise de dados suficientes para determinar o potencial de envelhecimento cronológico de várias estirpes diferentes ou condições. Se realizada corretamente, as curvas de crescimento obtidas a partir da máquina Bioscreen MBR C deve ser semelhante ao mostrado na Figura 2 e as curvas de sobrevivência resultante deve ser semelhante aos mostrados na Figura 3. Geralmente, do tipo selvagem células cultivadas nas condições descritas aqui terão uma duração de vida média da ordem cronológica de 7 dias. Variação substancial na sobrevida é observado em cepas diferentes e sob algumas condições, tais como o crescimento em meios de glicose 0,05%, a sobrevida mediana pode exceder 30 dias. <img src="/files/ftp_upload/1156/1156fig1.png" alt="" /> Figura 1. Saída de dados do Bioscreen programa &quot;EZExperiment&quot;. A coluna mostra o momento em que uma leitura de absorbância foi tirada. Sucessivas colunas representam os poços da placa do favo de mel inoculados com células retiradas de culturas de envelhecimento. <img src="/files/ftp_upload/1156/1156fig2.png" alt="" /> Figura 2. Curvas de crescimento a partir de um único replicar biológica ao longo de uma experiência. Há uma clara mudança nas curvas ao longo do tempo como as células do envelhecimento na cultura perdem a viabilidade. O período de tempo entre o ponto de tempo inicial (dia 2) e um ponto de tempo sucessivos determina viabilidade nessa idade particular. <img src="/files/ftp_upload/1156/1156fig3a.png" alt="" /><img src="/files/ftp_upload/1156/1156fig3b.png" alt="" /> Figura 3. A) A curva de sobrevida usando os dados gerados conseqüência da Figura 1. No dia tempo 2 é definido como o ponto de viabilidade de 100%. B) curvas de sobrevivência final de duas cepas testadas no mesmo experimento. Essas curvas representam as viabilidades de sobrevivência média de três repetições para cada biológica tensão. Barras de erro representam o desvio padrão dentro biológica repetições. A área sombreada sob a curva de sobrevivência representa a sobrevivência integral (SI) para a cepa 1. <table border="1"><tbody><tr><td colspan="2"> Tabela 1. Médio Definido sintético usado para estudos de envelhecimento cronológico (cepa background BY4743) </td></tr><tr><td> Componente </td><td> Concentração (g / L) </td></tr><tr><td> D-glucose </td><td> 20 </td></tr><tr><td> Base de levedura de nitrogênio (-AA/AS) </td><td> 1,7 </td></tr><tr><td> (NH 4) 2 SO 4 </td><td> 5,0 </td></tr><tr><td> Adenina </td><td> 0,04 </td></tr><tr><td> L-Arginina </td><td> 0,02 </td></tr><tr><td> Ácido L-aspártico </td><td> 0,1 </td></tr><tr><td> Ácido L-glutâmico </td><td> 0,1 </td></tr><tr><td> L-Histidina </td><td> 0,1 </td></tr><tr><td> L-leucina </td><td> 0,3 </td></tr><tr><td> L-Lisina </td><td> 0,03 </td></tr><tr><td> L-Metionina </td><td> 0,02 </td></tr><tr><td> L-Fenilalanina </td><td> 0,05 </td></tr><tr><td> L-Serina </td><td> 0,375 </td></tr><tr><td> L-Treonina </td><td> 0,2 </td></tr><tr><td> L-Triptofano </td><td> 0,04 </td></tr><tr><td> L-Tirosina </td><td> 0,03 </td></tr><tr><td> L-valina </td><td> 0,15 </td></tr><tr><td> Uracil </td><td> 0,1 </td></tr></tbody></table> Nota: Esta receita é responsável por auxotrophies em linhagem diplóide BY4743. Auxotrophies aminoácido deve ser compensado pela adição de uma concentração 5X final para o meio sintético completo.

<ol><li>Steinkraus, K. A., Kaeberlein, M., Kennedy, B. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Replicative+aging+in+yeast%3A+the+means+to+the+end%5BTitle%5D)+AND+%22Annu+Rev+Cell+Dev+Biol%22%5BJournal%5D)">Replicative aging in yeast: the means to the end.</a> Annu Rev Cell Dev Biol. 24, 29(2008).</li>
<li>Kaeberlein, M. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aKaeberlein%2C+M+%22Handbook+of+models+for+human+aging%22">Handbook of models for human aging</a>. Conn, P. M. , Elsevier Press. Boston. 109(2006).</li>
<li>Fabrizio, P., Longo, V. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+chronological+life+span+of+Saccharomyces+cerevisiae%5BTitle%5D)+AND+%22Aging+Cell%22%5BJournal%5D)">The chronological life span of Saccharomyces cerevisiae.</a> Aging Cell. 2 (2), 73(2003).</li>
<li>Murakami, C. J., Burtner, C. R., Kennedy, B. K., Kaeberlein, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+method+for+high-throughput+quantitative+analysis+of+yeast+chronological+life+span%5BTitle%5D)+AND+%22J+Gerontol+A+Biol+Sci+Med+Sci%22%5BJournal%5D)">A method for high-throughput quantitative analysis of yeast chronological life span.</a> J Gerontol A Biol Sci Med Sci. 63 (2), 113(2008).</li>
<li>Piper, P. W., Harris, N. L., MacLean, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preadaptation+to+efficient+respiratory+maintenance+is+essential+both+for+maximal+longevity+and+the+retention+of+replicative+potential+in+chronologically+ageing+yeast%5BTitle%5D)+AND+%22Mech+Ageing+Dev%22%5BJournal%5D)">Preadaptation to efficient respiratory maintenance is essential both for maximal longevity and the retention of replicative potential in chronologically ageing yeast.</a> Mech Ageing Dev. 127 (9), 733(2006).</li>
<li>Fabrizio, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Superoxide+is+a+mediator+of+an+altruistic+aging+program+in+Saccharomyces+cerevisiae%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Superoxide is a mediator of an altruistic aging program in Saccharomyces cerevisiae.</a> J Cell Biol. 166 (7), 1055(2004).</li>
</ol>

O alto rendimento cronológica ensaio expectativa de vida aqui descrito é um método eficaz para quantificar o potencial de envelhecimento de um grande número de cepas com alta precisão e de precisão. O principal avanço deste método em relação aos métodos clássicos de determinação de sobrevivência através da contagem de unidades formadoras de colônia (por exemplo, ver 3) é o uso de um dispositivo de leitura shaker / incubadora / placa, como a máquina Bioscreen MBR C para obtenção de curvas de alta resolução de ...

<table><tbody><tr><td>Bacto Peptone</td><td>Reagente</td><td>BD Biosciences</td><td>211677</td><td></td></tr><tr><td>Extrato de Levedura Bacto</td><td>Reagente</td><td>BD Biosciences</td><td>288620</td><td></td></tr><tr><td>Ágar Difco</td><td>Reagente</td><td>BD Biosciences</td><td>214530</td><td></td></tr><tr><td>Base de Nitrogênio para Levedura sem A.A. e A.S.</td><td>Reagente</td><td>MidSci</td><td>J630-500G</td><td></td></tr><tr><td>Ácidos Aminoácidos</td><td>Reagente</td><td>Sigma-Aldrich</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Sulfato de Amônio</td><td>Reagente</td><td>Spectrum</td><td>AM185</td><td></td></tr><tr><td>Dextrose</td><td>Reagente</td><td>Fisher Scientific</td><td>D16-10</td><td></td></tr><tr><td>Equipamento Bioscreen C MBR</td><td>Ferramenta</td><td>Growth Curves USA</td><td>5101370</td><td></td></tr><tr><td>Placa Honeycomb de 100 poços Bioscreen</td><td>Ferramenta</td><td>Growth Curves USA</td><td>9502550</td><td></td></tr></tbody></table>

quantificar yeast life span cronológica por conseqüência de células envelhecidas

Quantifying Yeast Chronological Life Span by Outgrowth of Aged Cells

A levedura de brotamento<em&gt; Saccharomyces cerevisiae</em&gt; Provou ser um organismo modelo importante no campo da pesquisa sobre o envelhecimento<sup&gt; 1</sup&gt;. O replicativa e expectativa de vida cronológica são dois paradigmas estabelecidos usado para estudar o envelhecimento em leveduras. Envelhecimento replicativo é definido como o número de células filhas uma célula mãe solteira fermento produz antes de senescência; envelhecimento cronológico é definido pelo comprimento das células de tempo podem sobreviver em uma não-divisão, o estado de quiescência-like<sup&gt; 2</sup&gt;. Nós desenvolvemos um método de alto rendimento para a determinação quantitativa do tempo de vida cronológica. Este método envolve o envelhecimento das células em um meio definido sob agitação e à temperatura constante. Em cada idade-ponto, uma sub-população de células é retirado da cultura de envelhecimento e inoculadas em meio de cultura rico. A alta resolução curva de crescimento é, então, obtido para esta sub-população de células envelhecidas usando uma máquina Bioscreen C MBR. Um algoritmo é então aplicado para determinar a proporção relativa de células viáveis ​​em cada sub-população com base na cinética de crescimento em cada idade-ponto. Este método requer substancialmente menos tempo e recursos em comparação com outros ensaios cronológica vida útil, mantendo a reprodutibilidade e precisão. A natureza de alto rendimento deste ensaio devem permitir grande escala telas genética e química para identificar modificadores de longevidade da novela para mais testes em organismos mais complexos.

Envelhecimento cronológico em levedura refere-se à perda de viabilidade celular associada ao tempo na fase estacionária. Aqui nós descrevemos um método de alto rendimento para determinar quantitativamente fermento esperança de vida cronológica.

Quantificar Yeast Life Span cronológica por conseqüência de células envelhecidas

A levedura de brotamento Saccharomyces cerevisiae provou ser um organismo modelo importante no campo da pesquisa sobre o envelhecimento 1. A replicativa e...

Culturas envelhecidas são mantidas em tubos de ensaio a 30 graus Celsius com agitação constante. Bio, um tambor rotativo, uma alíquota de células de cada cultura envelhecida é inoculada em um poço de uma placa de favo de mel Bio Screen contendo meio YEPD. A máquina Bio Screen CMBR incuba e agita a placa de favo de mel por 24 horas enquanto mede a densidade óptica de cada poço.A cada 30 minutos, curvas de crescimento podem ser geradas a partir dos dados obtidos pelo Bio Screen, os quais podem ser usados para calcular a viabilidade de cada cultura envelhecida. Após a incubação de 24 horas, as densidades celulares na placa em favo de mel podem variar conforme a viabilidade da cultura envelhecida original. Olá, sou Chris Murakami do laboratório do Dr. Matt Capline e do Departamento de Patologia aqui na Universidade de Washington.Hoje vamos mostrar o procedimento para quantificar a longevidade cronológica de leveduras utilizando o crescimento de células envelhecidas. Utilizamos este procedimento em nosso laboratório para estudar como fatores genéticos e ambientais influenciam a longevidade da levedura. Então, vamos começar.Para preparar culturas envelhecidas, primeiro faça o estriamento das cepas de levedura a partir de estoques congelados em placas de ágar YEPD e incube as células a 30 graus Celsius por 48 horas ou até que colônias isoladas apareçam. Uma vez que colônias isoladas tenham aparecido, selecione colônias isoladas e inocule em cinco mililitros de meio líquido YEPD.Em tubos de ensaio, cultive as culturas durante a noite a 30 graus Celsius em um tambor rotativo para manter agitação constante; após a incubação noturna, utilize 50 microlitros de cada cultura para inocular cinco mililitros de meio sintético completo. Geralmente, são preparadas três culturas SC para cada linhagem, a fim de fornecer triplicata de replicação biológica na análise de longevidade para cada linhagem analisada. Mantenha as culturas a 30 graus Celsius com agitação constante no tambor rotativo durante todo o experimento, o que geralmente dura duas semanas ou mais após dois dias de cultivo.No meio SC, as células devem estar em fase estacionária e o primeiro ponto etário está pronto para ser coletado. Pontos etários subsequentes devem ser coletados a cada dois ou três dias durante um mínimo de duas semanas. Para iniciar este procedimento, prepare a tela bio.Placas de 100 poços em favo de mel para inoculação, preenchendo cada poço com 145 microlitros de YEPD. Certifique-se de deixar pelo menos um poço contendo apenas YEPD e sem células para análise posterior dos dados. Retire as culturas envelhecidas do incubador.Resumidamente, agite a primeira cultura a ser inoculada na placa de favo. Tenha cuidado para não derramar nenhuma parte da cultura. Flame a boca do tubo de ensaio e remova cinco microlitros da cultura, pipetando-os no primeiro poço da placa de favo.Não se esqueça de flamear a boca do tubo de ensaio. Após remover a alíquota de cinco microlitros, repita este procedimento de inoculação para cada cultura envelhecida. Certifique-se de anotar a posição do poço correspondente a cada cultura de forma idêntica.As posições dos poços devem ser utilizadas para cada ponto de idade subsequente durante todo o experimento. Retorne as culturas para o incubador a 30 graus Celsius. Quando as inoculações forem concluídas, após as culturas terem sido inoculadas na placa de favo de mel, a placa é inserida na máquina Bio Screen CMBR.Para fazer isso, exponha o compartimento do incubador levantando a tampa. Em seguida, remova a cobertura da bandeja de amostras. Insira a placa de favo recém-inoculada na bandeja de amostras.Utilize o slot esquerdo. Se você estiver lendo apenas uma placa, recoloque a tampa na bandeja de amostras e feche a tampa do compartimento do incubador. É importante garantir que o fluido de transferência de calor esteja acima do nível mínimo de enchimento.Se não estiver, adicione mais fluido de transferência de calor utilizando uma pipeta de 1000 microlitros. Usando o software de tela biológica Easy Experiment, defina os seguintes parâmetros para obter curvas de crescimento adequadas para croce visi. Para o número de amostras, insira o número de poços com meio ou 200, e configure o filtro entre quatro 20 e cinco 80 nanômetros de largura de banda.Defina a temperatura em 30 graus Celsius. A duração do experimento deve ser de um dia, zero horas e zero segundos. O intervalo de medição deve ser de 30 minutos.E, finalmente, a agitação deve ser configurada para agitação contínua e clique em iniciar para começar as leituras. Obtenha os arquivos de saída da máquina bio screen CMBR. O software easy experiment irá exportar os dados do bio screen como um arquivo delimitado por tabulações, compatível com o Microsoft Excel e outros softwares.A primeira coluna, coluna A, mostra o tempo em que a medição de DO foi realizada durante o experimento. As colunas subsequentes representam cada poço nas placas honeycomb do bio screen, inoculadas com células provenientes dos cultivos envelhecidos. Exclua a primeira leitura de DO de cada coluna, pois essa leitura é ruído.Normalize os dados subtraindo o valor da densidade óptica do poço com YEPD sozinho dos valores de densidade óptica em cada coluna. Isso remove a absorbância de fundo causada pelo meio de cultura. As curvas de crescimento.As curvas irão se deslocar em função da idade; por exemplo, ao traçar as curvas de crescimento da coluna um, poço um da placa de favo ao longo dos seis pontos temporais, observa-se um deslocamento distinto das curvas para a direita ao longo do tempo. O intervalo de tempo entre o ponto inicial, dia dois, e um ponto temporal subsequente determina a viabilidade naquela idade específica. Calcule o tempo de duplicação para cada poço com base na cinética de crescimento do ponto temporal do dia dois.A equação utilizada para calcular o tempo de duplicação é esta, onde OD um e OD dois representam medições sucessivas de densidade óptica e T um e T dois são o tempo entre as medições. Calcule os tempos de duplicação apenas entre valores de OD de 0,2 e 0,5. A média desses valores é o tempo de duplicação para isso.Bem, a maioria das linhagens selvagens de levedura deve apresentar um tempo de duplicação entre 85 e 90 minutos para cada ponto etário. Calcule o deslocamento temporal delta T nas curvas de crescimento em relação ao ponto etário inicial, que é o dia dois. Uma maneira simples de fazer isso é determinar a diferença no tempo necessário para cada poço atingir uma DO de 0,3 entre o ponto etário inicial e cada ponto etário subsequente.O tempo em que um poço específico atingiu uma DO de 0,3 pode ser calculado a partir da equação de regressão linear correspondente à densidade óptica em log natural. Calcule a fração sobrevivente em cada ponto etário para gerar uma curva de sobrevivência com o ponto etário do segundo dia inicial, representando 100% de viabilidade para cada ponto etário subsequente. Calcule a sobrevivência percentual utilizando a seguinte equação.Onde SN é a porcentagem de sobrevivência. Delta TN é o deslocamento temporal, e Sigma N é o tempo de duplicação. Gere curvas de sobrevivência conforme desejado para cada um.Mediante o gráfico da fração de células viáveis em função da idade, calcule a integral de sobrevivência para cada poço; a IS é definida como a área sob a curva de sobrevivência e pode ser estimada por esta fórmula, onde a idade N é o ponto etário e SN é o valor de sobrevivência nesse ponto etário. Determine os parâmetros estatísticos dos poços replicados a partir dos dados de IS e de sobrevivência. Parâmetros estatísticos comumente analisados incluem média, mediana e variância para cada conjunto de réplicas biológicas. Um teste T ou análise semelhante pode ser utilizado para comparação aos pares da IS entre diferentes grupos experimentais e controles.Também pode ser desejável gerar curvas de sobrevivência a partir da média de réplicas biológicas. Ao final do experimento, você terá traçado a curva de sobrevivência e realizado uma análise de dados suficiente para determinar o potencial de envelhecimento cronológico de diversas cepas ou condições diferentes. Se realizado corretamente, as curvas de crescimento obtidas a partir do equipamento Bio Screen CMBR devem ser semelhantes a esta curva. Geralmente, células do tipo selvagem cultivadas sob as condições descritas aqui apresentarão uma longevidade cronológica mediana na ordem de sete dias.Observa-se uma variação substancial na sobrevivência entre diferentes cepas e em certas condições, como o crescimento em meio com 0,05% de glicose, em que a sobrevida mediana pode exceder 30 dias. Acabamos de mostrar um método de alto rendimento para determinar quantitativamente a longevidade cronológica da levedura. Croce visier.É importante lembrar que, ao realizar este procedimento, a manutenção rotineira do equipamento Bio Screen CMBR é essencial para garantir dados reprodutíveis e precisos. É isso aí. Boa sorte em seus experimentos.

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