Name: Espectroscopia de Ressonância Magnética de viver Drosophila melanogaster Usando Angle Spinning Magia (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2010-04-15T16:30:00.000+00:00
Duration: 7 min 33 s
Description: Aprenda a caracterização molecular de Drosophila melanogaster vivos usando espectroscopia de ressonância magnética de alta resolução com rotação em ângulo mágico. Esta técnica não invasiva permite analisar metabolitos in vivo.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Este trabalho foi financiado em parte por um Instituto Nacional de Saúde (NIH) para conceder AI063433 Laurence G. Rahme, um Instituto Nacional Institutes of Health (NIH) Centro de Grant (P50GM021700) para Ronald G. Tompkins (A. Aria Tzika, Diretor de o núcleo de RMN), e um Hospital Shriners para Crianças Bolsa de Investigação (# 8893) para A. Aria Tzika. Agradecemos a Dionyssios Mintzopoulos Ph.D. de assistência nas fases iniciais de desenvolvimento deste protocolo e Ovidiu C. Andronesi Ph.D. de assistência com a seqüência de pulso TOBSY.

Parte 1: Preparando-se para Drosophila Medidas HRMAS <ol><li> Usando o padrão flylab procedimentos 1, recolher recém eclosing moscas durante 3 dias e transferi-los para voar frascos contendo alimentos fly fresco. Incubar as moscas coletadas por 5 dias para que as moscas se tornará 5-8 dias de idade um pouco antes do experimento. Apenas um sexo (geralmente machos) é usada para experimentos. </li><li> Use saudável, do tipo selvagem intacta voa para comparar com tratados por exemplo, traumatizados ou moscas geneticamente alterados 1. </li><li> Lugar moscas única em tubos de 2ml contendo um pedaço (~ 0,2 ml) de mosca de alimentos 24 horas antes do experimento. Estes tubos têm um furo no copo tubo feito usando uma agulha de insulina chama-aquecido. </li><li> Pesar os tubos imediatamente antes e após a inserção voar utilizando uma balança de alta precisão e definir o peso de cada fly s subtraindo-se o primeiro valor do segundo. A única mosca macho pesa geralmente 0,7-1 mg. </li></ol> Parte 2: Preparação HRMAS Rotor. <ol><li> Coloque um único tubo em gelo por menos de um minuto para anestesiar o interior voar. </li><li> Lay a mosca em uma camada de papel alumínio colocado sobre o gelo e empurre a voar delicadamente no espaço semi-esférica oca da inserção rotor NMR utilizando uma escova macia para garantir a inserção voar completa, evitando lesões voar. </li><li> Coloque a inserir no óxido de zircônio (ZrO 2) tubo de rotor (4 mm de diâmetro, 50 ul) para localizar as moscas entre o rotor e inserir na parte inferior do rotor (ver figura 1). </li><li> Feche a inserção com um parafuso e cobri-lo com parafilme (ver figura 1) para evitar o contato entre a mosca eo TSP solução-padrão (TSP: trimetilsilil-propiônico-2 ,2,3,3-d4 ácido, Mw = 172, δ = 0,00 ppm, 50 mM em água deuterada-D 2 O, que funcionam como uma referência tanto para deslocamento químico ressonância e quantificação). </li><li> Adicionar 8 mL de solução padrão TSP em cima do insert rotor. (Ver figura 1). </li><li> Aperte bem todo o conjunto em que os rotores com uma tampa superior (ver figura 1). </li></ol> Parte 3: HRMAS Aquisição de Dados <ol><li> Introduzir o rotor na sonda HRMAS e posicioná-la no ângulo mágico 54,7 ° (ver figura 1). </li><li> Ajuste de temperatura de 4 ° C por uma unidade de BTO-2000 em conjunto com a unidade pneumática MAS. Moscas são mantidos a 4 ° C, enquanto no espectrômetro para manter a anestesia. </li><li> Definir a taxa de HRMAS 1 H MRS girando em 2 MAS kHz. </li><li> Estabilizar a freqüência de rotação MAS de 2,0 ± 0,001 kHz por um controlador de velocidade MAS (freqüência de rotação). </li><li> Para a preparação de ímã: sintonia e combinar a bobina para um melhor desempenho e calço o ímã para ótima qualidade de espectros. </li><li> Adquirir uma dimensão um espectro de H usando rotor sincronizado Carr-Purcell-Meiboom-Gill (CPMG) spin echo seqüência de pulsos 2, [90 ° - (τ-180 ° - τ) n-aquisição], que funciona como um filtro para 2 T remover o alargamento espectral 1 H RMN único voar para adquirida unidimensional dados sobre todas as amostras. Sincronizar o atraso inter-pulso (τ = 500μs) para a frequência de rotação MAS (2 kHz). Definir o número de transientes em 256 com 32,768 (32k) pontos de dados. Aquisição em tempo 9 min. </li><li> Aquisição de duas dimensões (2D) 1 H-1 H RMN HRMAS único voar em todas as amostras usando uma seqüência TOBSY com pulsos adiabáticos 3. Parâmetros de aquisição são: pontos de dados de dimensão 2k direta (11 ppm largura espectral), a água 1 s pré-saturação durante o atraso de relaxamento, 8 varreduras por incremento, 128 incrementos, o tempo de 2 s repetição total, 45 ms de tempo de mistura, e um total de aquisição tempo de 29 min. </li></ol> Parte 4: Processamento de Dados / Análise <ol><li> Analisar a MRspectra de espécimes usando MestReC software (Mestrelab Research, www.mestrec.com) </li><li> Use uma linha de alargamento função apodização de 0,5 Hz e se aplicam a todos os 1 HRMAS FIDs H antes da transformação de Fourier. </li><li> Referência o espectro MR em relação ao TSP em δ = 0,0 ppm (padrão externo). </li><li> Fase de espectros manualmente e aplicar um estimador base Whittaker para subtrair os componentes ampla da linha de base antes de cálculos de área de pico. </li><li> Estimativa de áreas dos picos usando software MestReC. Escala de alturas de pico em relação a TSP para cada espectro adquirido (altura do pico TSP = 1). Use t-testes (bicaudal, p &lt;0,05) para comparação dentro do grupo-a entre-grupos rácios. </li><li> Parâmetros de processo 2D TOBSY são: QSINE = função de janela 2 em ambas as dimensões, FT com 2k pontos na dimensão diretos e zero-enchimento para 1k na segunda dimensão, correção de fase em ambas as dimensões e correção de linha de base na segunda dimensão. </li><li> Produzir os espectros 2D utilizando Sparky programa (TD Goddard e DG Kneller, SPARKY 3, USCF, <a href="http://www.cgl.ucsf.edu/home/sparky/">http://www.cgl.ucsf.edu/</a>home / sparky /) </li></ol> Parte 5: Spectra Representante do Live moscas Drosophila melanogaster Os procedimentos descritos acima permitem coletar espectros reprodutíveis das moscas Drosophila melanogaster ao vivo. Figuras 2 e 3 mostram representante MR espectros adquiridos no tipo selvagem (wt) Oregon-R moscas. A Figura 2 apresenta 1D 1 H HRMAS espectros CPMG. Principais componentes lipídicos [H 3 C (0,89 ppm), (C H 2) n (1,33 ppm), C H 2 C-CO (1.58ppm), C H 2 C = C (2,02 ppm), H 2 C = C O (2,24 ppm), C = C H H (5,33 ppm)] glicerol, (1,3-C H 4,10 ppm e 4,30 ppm; 2-CH 2 5,24 ppm), e metabólitos pequeno: β-alanina (Ala-β , 2,57 ppm), acetato (Ac, 1,97 ppm), fosfocolina (PC, 3,22 ppm) e phophoetanolamine (PE, 3.23ppm) foram detectadas e atribuídas de acordo com relatórios anteriores 4, 5. Sinais em 2,02 ppm foram atribuídos aos prótons de metileno do H2-CH = CH C porção de mono-ácidos graxos insaturados (ie palmitoléico). Os ácidos insaturados foram identificados por um sinal em 5,33 ppm produzidas por prótons do-CH = CH-metade. Metabólitos de pequeno porte que não poderia ser atribuído ou não eram visíveis a utilização do espectro 1D foram detectadas utilizando 2D 1 H-1 H TOBSY HRMAS (ver figura 3). <img src="/files/ftp_upload/1710/1710fig1.jpg" alt="Figura 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 1"> Figura 1. Experimental criação de in vivo HRMAS 1H MRS para a investigação de viver Drosophila em 14,1 T. externo padrão trimetilsilil-propiônico-2 ,2,3,3-ácido d4 em água deuterada (TSP / D 2 O). Na praça: a posição do rotor no ângulo mágico em HRMAS sonda. <img src="/files/ftp_upload/1710/1710fig2.jpg" alt="Figura 2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 2"> Figura 2. In vivo 1D 1 H HRMAS espectros CPMG de uma mosca Drosophila melanogaster ao vivo wt. Componentes lipídicos: C H 3 (0,89 ppm), (C H 2) n (1,33 ppm), C H 2 C-CO (1.58ppm), acetato (Ac), C H 2 C = C (2,02 ppm), C H 2 C = O glicerol (2,24 ppm), β-alanina (β-Ala), fosfocolina (PC) e phophoetanolamine (PE), (1,3-C H 4,10, 4,30 ppm; 2-H 2 C 5,22 ppm) , C H H = C (5,33 ppm). <img src="/files/ftp_upload/1710/1710fig3.jpg" alt="Figura 3" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 3"> Figura 3. In vivo 2D 1H-1H TOBSY HRMAS espectro de uma mosca Drosophila melanogaster ao vivo em peso a 14,1 metabólitos T. Pequenas e componentes lipídicos foram identificados. Metabolitos: alanina (Ala), β-alanina (β-Ala), arginina (Arg), glutamina (Gln), glutamato (Glu), PC fosfocolina (PC), phophoetanolamine (PE), taurina (Tau), α-glicose (α-Glc) e glicerol. Lipídios componentes: C H 3 (0,89 ppm), (C H 2) n (1,33 ppm), C H 2 C-CO (1,58 ppm), C H 2 C = C (2,02 ppm), C H 2 C = O (2,24 ppm), C = C H H (5,33 ppm).

<ol><li>Apidianakis, Y., Rahme, L. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Drosophila+melanogaster+as+a+model+host+for+studying+Pseudomonas+aeruginosa+infection%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Protoc%22%5BJournal%5D)">Drosophila melanogaster as a model host for studying Pseudomonas aeruginosa infection.</a> Nat Protoc. 4, 1285-1294 (2009).</li>
<li>Meiboom, S., Gill, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Modified+spin-echo+method+for+measuring+nuclear+relaxation+time%5BTitle%5D)+AND+%22Rev+Sci+Instrum%22%5BJournal%5D)">Modified spin-echo method for measuring nuclear relaxation time.</a> Rev Sci Instrum. 29, 688-691 (1958).</li>
<li>Andronesi, O. C., Mintzopoulos, D., Struppe, J., Black, P. M., Tzika, A. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Solid-state+NMR+adiabatic+TOBSY+sequences+provide+enhanced+sensitivity+for+multidimensional+high-resolution+magic-angle-spinning+1H+MR+spectroscopy%5BTitle%5D)+AND+%22J+Magn+Reson%22%5BJournal%5D)">Solid-state NMR adiabatic TOBSY sequences provide enhanced sensitivity for multidimensional high-resolution magic-angle-spinning 1H MR spectroscopy.</a> J Magn Reson. 193, 251-258 (2008).</li>
<li>Astrakas, L. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Proton+NMR+spectroscopy+shows+lipids+accumulate+in+skeletal+muscle+in+response+to+burn+trauma-induced+apoptosis%5BTitle%5D)+AND+%22Faseb+J%22%5BJournal%5D)">Proton NMR spectroscopy shows lipids accumulate in skeletal muscle in response to burn trauma-induced apoptosis.</a> Faseb J. 19, 1431-1440 (2005).</li>
<li>Fan, T. W. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Metabolite+profiling+by+one-+and+two+dimensional+NMR+analysis+of+complex+mixtures%5BTitle%5D)+AND+%22Prog+Nuc+Magn+Reson+Spec%22%5BJournal%5D)">Metabolite profiling by one- and two dimensional NMR analysis of complex mixtures.</a> Prog Nuc Magn Reson Spec. 28, 161-219 (1996).</li>
<li>Null, B., Liu, C. W., Hedehus, M., Conolly, S., Davis, R. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High-resolution%2C+in+vivo+magnetic+resonance+imaging+of+Drosophila+at+18.8+Tesla%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">High-resolution, in vivo magnetic resonance imaging of Drosophila at 18.8 Tesla.</a> PLoS One. 3, e2817-e2817 (2008).</li>
<li>Zektzer, A. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Improved+signal+to+noise+in+high-resolution+magic+angle+spinning+total+correlation+spectroscopy+studies+of+prostate+tissues+using+rotor-synchronized+adiabatic+pulses%5BTitle%5D)+AND+%22Magn+Reson+Med%22%5BJournal%5D)">Improved signal to noise in high-resolution magic angle spinning total correlation spectroscopy studies of prostate tissues using rotor-synchronized adiabatic pulses.</a> Magn Reson Med. 53, 41-48 (2005).</li>
</ol>

Experimentos em animais foram realizados de acordo com as diretrizes e regulamentos estabelecidos pelo Massachusetts General Hospital Institucional animal Comité de Investigação Review Board.

Com exceção do recente relatório sobre a viabilidade de ressonância magnética in vivo em moscas de fruta 6, in vivo MRS estudos em Drosophila ainda não foram relatados. No protocolo, descrevemos a implementação de um romance in vivo HRMAS uma abordagem H-MRS para a detecção de moléculas biologicamente importantes. Especificamente, nós detectamos lipídios e metabólitos em pequena viver Drosophila voa a 14,1 T em aproximadamente 45 min, o que permite tempo...

<table><tbody><tr><td>óxido de deutério</td><td>Reagente</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>7789-20-0</td><td></td></tr><tr><td>3-(trimetilsilil)propiônico-2,2,3,3-d&lt;sub&gt;4&lt;/sub&gt; ácido</td><td>Reagente</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>24493-21-8</td><td></td></tr><tr><td>agar, sacarose, levedura, farelo de milho</td><td>Alimento</td><td>Genesee Scientific</td><td></td><td>&lt;a href=&quot;http://www.flystuff.com/&quot;&gt;http://www.flystuff.com/&lt;/a&gt;</td></tr><tr><td>Moscas Oregon RS ou Canton-S</td><td>Linhas de moscas adultas</td><td>Centro de Estoque Bloomington</td><td></td><td>&lt;a href=&quot;http://flystocks.bio.indiana.edu/&quot;&gt;http://flystocks.bio.indiana.edu/&lt;/a&gt;</td></tr><tr><td>Pincel</td><td>Equipamento</td><td></td><td></td><td>(tamanho 0)</td></tr><tr><td>tubos de 2 ml</td><td>Equipamento</td><td>Fisher Scientific</td><td>K749521-1590</td><td></td></tr><tr><td>Incubadoras para moscas</td><td>Equipamento</td><td></td><td></td><td>alta capacidade de umidade (60-75%), temperatura ajustável e ciclo claro:escuro de 12 h:12 h.</td></tr><tr><td>Espectrômetro de RMN Bruker Bio-Spin Avance (600,13 MHz) com sonda de 4 mm de tripla ressonância (&lt;sup&gt;1&lt;/sup&gt;H, &lt;sup&gt;13&lt;/sup&gt;C, &lt;sup&gt;2&lt;/sup&gt;H) Sonda HRMAS </td><td>Equipamento</td><td>Bruker Corporation</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Unidade BTO-2000 em combinação com uma unidade pneumática MAS</td><td>Equipamento</td><td>Bruker Corporation</td><td></td><td></td></tr><tr><td>rotor de óxido de zircônio de 4 mm (capacidade de 50 µl)</td><td>Equipamento</td><td>Bruker Corporation</td><td>B3829 (loja da Bruker)</td><td></td></tr><tr><td>MestReC (Mestrelab Research) </td><td>Software</td><td></td><td></td><td>Análise de espectros de RMN 1D&lt;br/&gt;&lt;a href=&quot;http://mestrelab.com/&quot;&gt;http://mestrelab.com/&lt;/a&gt;</td></tr><tr><td>SPARKY 3, USCF</td><td>Software</td><td></td><td></td><td>Análise de espectros de RMN 2D&lt;br/&gt;&lt;a href=&quot;http://www.cgl.ucsf.edu/home/sparky/&quot;&gt;http://www.cgl.ucsf.edu/home/sparky/&lt;/a&gt;</td></tr></tbody></table>

espectroscopia de ressonância magnética de viver drosophila melanogaster usando angle spinning magia

Magnetic Resonance Spectroscopy of live Drosophila melanogaster using Magic Angle Spinning

Alta Resolução Angle Spinning Magia (HRMAS) espectroscopia de prótons por ressonância magnética (<sup&gt; 1</sup&gt; H-MRS) é uma técnica não destrutiva romance que melhora espectral da linha de larguras e permite que espectros de alta resolução a ser obtido a partir de extratos, células intactas, culturas de células, tecidos e mais importante ainda intacta para investigar as relações entre metabolitos e processos celulares.<em&gt; In vivo</em&gt; HRMAS<sup&gt; 1</sup&gt; H-MRS estudos ainda não foram relatados na mosca da fruta ao vivo<em&gt; Drosophila melanogaster.</em&gt;<em&gt; Drosophila,</em&gt; Como um simples organismo genética, permite que as múltiplas funções biológicas e vários evolutivamente conservadas vias de sinalização a ser examinada em nível organismo inteiro e é um modelo útil para a investigação genética e fisiologia. Para este fim, desenvolvido e implementado um<em&gt; In vivo</em&gt; HRMAS<sup&gt; 1</sup&gt; H-MRS método para investigar ao vivo<em&gt; Drosophila</em&gt; 14,1 em T. Aqui, esboçamos uma HRMAS<sup&gt; 1</sup&gt; H-MRS protocolo para a caracterização molecular de<em&gt; Drosophila</em&gt; Com um espectrômetro MR convencional equipado com uma sonda HRMAS. Esta técnica é um romance,<em&gt; In vivo,</em&gt; Não-destrutivos<em&gt; Drosophila</em&gt; Abordagem de medição metabólito, que permite a identificação de biomarcadores da doença e, portanto, pode contribuir para o desenvolvimento terapêutico romance.

Esta técnica permite o uso de alta resolução, ângulo mágico de prótons girando MR espectroscopia (HRMAS 1H-MRS) para a caracterização molecular de viver<em&gt; Drosophila melanogaster</em&gt; Com um espectrômetro convencional 14,1 tesla equipado com uma sonda HRMAS.

Espectroscopia de Ressonância Magnética de viver Drosophila melanogaster Usando Angle Spinning Magia

A espectroscopia de ressonância magnética de prótons (1H-MRS) com rotação no ângulo mágico de alta resolução (HRMAS) é uma técnica inovadora e não destrutiva que melhora a resolução espectral...

24 horas antes do experimento, uma mosca macho é colocada em um tubo de dois mililitros. Após anestesia breve com gelo, a mosca é empurrada para dentro do inserto do rotor de RMN, que então é colocado no tubo do rotor. Uma solução padrão de TSP é adicionada sobre o inserto do rotor, e em seguida os rotores são fechados com uma tampa superior.O rotor é inserido na sonda H-R-M-A-S e posicionado no ângulo mágico de 54,7 graus. O espectrômetro é configurado para adquirir experimentos unidimensionais e bidimensionais. Por fim, os Mr.Spectra das amostras são analisados.Sou Valeria Rigi do Laboratório Cirúrgico de Ressonância Magnética Nuclear do Departamento de Cirurgia do Hospital Geral de Massachusetts e da Escola Médica de Harvard. Olá, sou Y AB do Laboratório de Cirurgia Molecular do Departamento de Cirurgia do Hospital Geral de Massachusetts e da Escola Médica de Harvard. Olá, sou Lawrence Achman, diretor do Laboratório de Cirurgia Molecular e do Departamento de Cirurgia do Hospital Geral de Massachusetts e da Escola Médica de Harvard.E eu sou Mario Zika, diretor do Laboratório Cirúrgico de Ressonância Magnética Nuclear do Massachusetts Journal Hospital e vinculado ao Aula Martin Center da Harvard Medical School. Hoje vamos mostrar a vocês um procedimento para a Caracterização Molecular de grandes Melanogaster utilizando espectroscopia de ressonância magnética com giro medic ango. Em nosso laboratório, utilizamos este procedimento para estudar metabólitos Sila in vivo, com o objetivo de identificar biomarcadores de doenças que contribuam para o desenvolvimento de novas terapias. Então, vamos começar.Comece a preparação coletando moscas recém-emergidas durante três dias e, em seguida, transfira-as para frascos contendo alimento fresco para moscas. Incube as moscas coletadas por cinco dias para que tenham entre cinco e oito dias de idade logo antes do experimento. Utilizamos apenas moscas macho em nossos experimentos.Prepare tubos experimentais de dois mililitros para as moscas usando uma agulha de insulina aquecida com chama para fazer um orifício na tampa do tubo. Em seguida, coloque moscas individuais nos tubos contendo um pedaço de alimento para moscas 24 horas antes do experimento. Use uma balança de alta precisão para pesar os tubos imediatamente antes e depois da inserção da mosca e determine o peso de cada mosca subtraindo os dois valores.Uma mosca macho isolada geralmente pesa cerca de 0,7 a um miligrama com as moscas preparadas. Vamos analisar a preparação do rotor de alta resolução com ângulo mágico ou H-R-M-A-S. Para começar.Coloque um único tubo no gelo por menos de um minuto. Para anestesiar a mosca no interior, posicione a mosca sobre uma camada de folha de alumínio colocada sobre gelo e use uma escova macia para empurrá-la suavemente para o espaço oco semiesférico do inserto de RMN. Certifique-se de que a mosca esteja completamente inserida, evitando qualquer lesão.Coloque o inserto no tubo do rotor de óxido de zircônio para posicionar as moscas entre o inserto do rotor e a base do rotor. Agora feche o inserto com um parafuso e cubra com paraforma para evitar qualquer contato entre a mosca e a solução padrão de TSP, que funciona como referência tanto para o deslocamento químico de ressonância quanto para a quantificação. Adicione oito microlitros da solução padrão de TSB sobre o inserto do rotor, fixe e aperte todo o conjunto do rotor com a tampa superior; com o rotor montado, vejamos como adquirir os dados de H-R-M-A-S.Introduza o rotor na sonda H-R-M-A-S e posicione-o no ângulo mágico, 54,7 graus. Em seguida, ajuste a taxa de rotação do H-R-M-A-S-H um MRS para dois quilohertz MAS e utilize um controlador de velocidade MAS para estabilizá-la. Ajuste a temperatura para quatro graus Celsius com uma unidade BTO 2000.Em combinação com a unidade pneumática MAS. As moscas são mantidas a quatro graus Celsius durante a permanência no espectrômetro para manter a anestesia, preparar o ímã, ajustar e casar a bobina para desempenho ideal e calibrar o ímã para obter qualidade ótima dos espectros. Após a conclusão da calibração, sincronize o atraso INTERPULSE com a frequência de rotação MAS.Defina o número de transientes como 256 com 32.768 pontos de dados. Adquira um espectro unidimensional de única passagem utilizando uma sequência de pulsos car sincronizada com o rotor, Purcell MEO kill ou spin echo CPMG. Essa sequência atua como um filtro T2 para remover alargamento espectral.Agora adquira o espectro unidimensional de uma mosca isolada em todas as amostras utilizando uma sequência topsy com pulsos atic. Abra o rotor e retire a mosca. Agora vamos ver como analisar os dados.Utilizamos o software mare para analisar os espectros de RM das nossas amostras. Para começar, utilize uma função de alargamento de linha de 0,5 hertz e aplique-a a todos os HRM A SH um fis antes da transformação de quatro anos. Referencie os espectros de RM em relação ao TS P em delta igual a 0,0 partes por milhão.Fase o espectro manualmente e aplique um estimador de linha de base de Whitaker para subtrair os componentes amplos da linha de base antes dos cálculos da área dos picos. Estime as áreas dos picos com o software mastre. Normalize as alturas dos picos em relação ao TSP para cada espectro adquirido.Agora vamos analisar alguns resultados representativos de RME. Abaixo, é apresentado um espectro representativo de ¹H-RM-ASC-CP-MG adquirido em moscas do tipo selvagem Oregon R. Os principais componentes lipídicos, glicerol e pequenos metabólitos como beta-alanina, acetato, fosfocolina e fosfoetanolamina foram detectados e atribuídos de acordo com relatos anteriores. Os sinais em 2,02 partes por milhão foram atribuídos aos prótons do grupo metileno da porção propano dos ácidos graxos monoinsaturados. Os ácidos insaturados foram identificados por um sinal em 5,33 partes por milhão, produzido pelos prótons do grupo alqueno.Metabólitos pequenos que não puderam ser atribuídos ou que não eram visíveis usando o espectro 1D foram detectados utilizando dois DH um H um top Z-H-R-M-A-S. Assim, acabamos de mostrar a você, pela primeira vez, como estudar o perfil bioquímico de drosófilas vivas utilizando espectroscopia de ressonância magnética de alto desempenho com rotação no ângulo mágico. Ao realizar este procedimento, é importante usar uma pipeta macia para inserir as moscas sem machucá-las.Certifique-se de não apertar o parafuso em excesso, evitando assim perfurar o inseto, e não adquira espectros por mais de uma hora, pois as moscas podem não sobreviver. É isso aí. Obrigado por assistir e boa sorte com seu experimento.

magnetic-resonance-spectroscopy-live-drosophila-melanogaster-using

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Neurociência

Hemócitos Drosophila dispersam sobre a totalidade do embrião em desenvolvimento. Este protocolo demonstra como montar e imagem essas migrações usando embriões com hemócitos fluorescente etiquetado.

Imagens ao vivo de Drosophila melanogaster Embrionárias Migrações hemócitos

Este protocolo descreve um método para escala mícron imagem tridimensional da concentração de oxigênio no ambiente imediato de células vivas por microscopia eletrônica de spin ressonância.

Ressonância paramagnética eletrônica Micro-imagem das Espécies ao vivo para o Mapeamento de oxigênio

Aqui ilustramos como microscopia de foto-ativado localização única molécula pode ser realizada no terminal nervoso motor de um vivo Drosophila melanogaster terceiro estádio de larva.

Na Vivo Único-molécula de rastreamento no Terminal do nervo Motor pré-sináptica da drosófila

Este protocolo descreve um método para registrar a atividade elétrica descendente do sistema nervoso central Drosophila melanogaster para permitir que o custo-eficiente e conveniente de teste de agentes farmacológicos, mutações genéticas das proteínas neurais, e/ou o papel das vias fisiológicas inexploradas.

Eletrofisiológica gravação da atividade do sistema nervoso Central de terceiro ínstar Drosophila Melanogaster

Aqui, apresentamos um protocolo para a visualização, detecção, análise e rastreamento do tráfico endógeno de mRNA em câmara de ovo de Drosophila melanogaster ao vivo usando balizas moleculares, microscopia confocal de disco giratório e análise de código aberto Software.

Visualizando e rastreando mRNAs endógenas em câmaras de ovo de Drosophila melanogaster ao vivo

Apresentado aqui é um protocolo para transferência criogênica de amostras congeladas para a dinâmica polarização nuclear (DNP) sonda de ressonância magnética nuclear (MAS). O protocolo inclui instruções para armazenamento de rotores antes do experimento e direções para medições de viabilidade antes e depois do experimento.

Amostra criogênica carregando em um espectrômetro de ressonância magnética nuclear de ângulo mágico que preserva a viabilidade celular

As estruturas moleculares e a dinâmica de sólidos, líquidos, gases e misturas são de interesse crítico para diversos campos científicos. A NMR mas de alta temperatura e alta pressão permite a detecção do ambiente químico dos constituintes em sistemas de fases mistas em ambientes químicos fortemente controlados.

Espectroscopia de ressonância magnética nuclear de alta temperatura e alta pressão no situ Magic Angle Spinning Nuclear Resonance

Aqui, fornecemos um protocolo detalhado para realizar imagens ao vivo da divisão assimétrica de células-tronco germinativas (GSCs) no nicho ovariano de Drosophila. Usamos uma linhagem transgênica que expressa de forma ubíqua uma fusão de proteína fluorescente verde (GFP) da proteína do espectrossomo Par-1.

Imagem ao vivo estendida de nichos de células-tronco germinativas de Drosophila melanogaster fêmea

A ressonância magnética (RM) tornou-se uma ferramenta cada vez mais popular para examinar o fenótipo de camundongos geneticamente modificados. Este artigo ilustra os métodos necessários para alcançar alto rendimento fenotipagem de ratos geneticamente alterados usando vários mouse MRI.

Múltiplas mouse-Imagem por Ressonância Magnética neuroanatômicos

Ferramentas optogenética codificados geneticamente permitir a manipulação não invasiva de neurónios específicos...

Optogenética estimulação do comportamento de fuga em<em&gt; Drosophila melanogaster</em

Aprenda a caracterização molecular de Drosophila melanogaster vivos usando espectroscopia de ressonância magnética de alta resolução com rotação em ângulo mágico. Esta técnica não invasiva permite analisar metabolitos in vivo.

Espectroscopia de Ressonância Magnética de viver Drosophila melanogaster Usando Angle Spinning Magia

Explorar mais vídeos