Secagem Química: Preparação de Amostras Biológicas para Microscopia Eletrônica de Varredura (MEV)

0 vistas4:17 min • April 30th, 2023

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- Para começar, comece desidratando e secando uma amostra fixa para reduzir a distorção da amostra causada pela remoção de gases e água líquida na pressão operacional reduzida dos microscópios eletrônicos de varredura convencionais, SEMs.

Para desidratar a amostra, lave-a com concentrações crescentes de etanol em água até atingir 100% de etanol. Em seguida, repita este processo com um agente de secagem químico em etanol até que a amostra seja lavada com agente de secagem puro. Transfira a amostra e o agente de secagem para um prato de evaporação. Cubra-o com o mínimo de agente de secagem adicional e deixe-o secar em um exaustor durante a noite.

Em seguida, monte a amostra preparada no topo de um toco de microscópio usando fita adesiva de carbono. Por fim, aplique tinta prateada nas bordas do toco e, em seguida, da borda do toco em cada uma das amostras, para reduzir o acúmulo de elétrons em excesso, o que pode resultar em artefatos de imagem indesejáveis.

Neste experimento, moscas-das-frutas, Drosophila melanogaster, são preparadas para análise de MEV usando o agente de secagem HMDS.

- Para preparar Drosophila melanogaster, mergulhe as moscas anestesiadas em 1 mililitro de fixador por 2 horas a 4 graus Celsius, certificando-se de que estejam completamente submersas.

Use uma pipeta de vidro para remover o fixador. Lave a amostra fixa de Drosophila em um tubo de microcentrífuga de 1,5 mililitro três vezes com 1 mililitro de tampão fosfato molar 0,1 pH 7,2 em temperatura ambiente por 10 minutos. Use uma pipeta de vidro para remover cada lavagem, tomando cuidado para não remover a amostra.

Em seguida, desidratar a amostra em um tubo de microcentrífuga, em um volume de 1 mililitro, usando uma série graduada de etanol por 10 minutos cada. Use uma pipeta de vidro para remover cada lavagem, tomando cuidado para não remover a amostra. Mantenha a amostra no tubo de microcentrífuga de 1,5 mililitro com etanol 100% suficiente para cobri-la.

Para realizar a secagem química das moscas usando HMDS, primeiro, substitua a solução de etanol 100% por uma solução 1 a 2 de HMDS e etanol 100% por 20 minutos. Em seguida, substitua a solução por uma solução 2 para 1 de HMDS e etanol a 100% por 20 minutos. Por fim, substitua esta solução por 100% HMDS por 20 minutos e repita o processo uma vez.

Transfira a amostra, que está em um tubo de microcentrífuga de 1,5 mililitro e HMDS, para um prato de pesagem de alumínio descartável. Substitua o HMDS 100% por HMDS 100% fresco apenas o suficiente para cobrir a amostra. Coloque a amostra dentro do prato de alumínio diretamente em uma capela de exaustão química para secar com uma tampa solta, como uma caixa, para evitar que detritos caiam sobre a amostra e deixe secar por 12 a 24 horas.

Para montar a Drosophila, rotule a parte inferior de um topo de montagem de alumínio. Use uma pinça de precisão para colocar as moscas secas na posição desejada em uma aba adesiva de carbono presa ao topo de um toco sob um microscópio de dissecação. Aplique adesivo condutor de prata ao redor das bordas externas dos stubbs.

Use um palito para conectar a tinta prateada às moscas, garantindo a condutividade, certificando-se de que a tinta não toque na área de imagem desejada. Coloque os tocos em uma caixa porta-topos. Em seguida, coloque a caixa aberta do suporte de topo em um dessecador e deixe a tinta prateada secar por pelo menos três horas.

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Última atualização: 15 agosto 2026