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Biologia
0 vistas • 3:24 min • April 30th, 2023
- Em C. elegans, o RNAi pode ser induzido alimentando vermes com bactérias que expressam RNA de fita dupla ou dsRNA de um plasmídeo de DNA recombinante.
Para começar, cultive E. coli HT115 resistente à tetraciclina transfectada com plasmídeo L4440 durante a noite em placas de ágar LB seletivas contendo tetraciclina e ampicilina, ou seu análogo funcional carbenicilina. Além do DNA alvo, o plasmídeo contém um gene para resistência à ampicilina. Apenas colônias de bactérias que herdam o plasmídeo podem crescer na presença desses antibióticos.
Em seguida, colha colônias de bactérias e expanda-as em meio LB líquido até a concentração desejada. Para induzir a expressão de dsRNA, transfira a solução bacteriana para placas de ágar de meio de crescimento de nematóides preparado, ou NGM, contendo IPTG.
Nesse sistema de expressão, o IPTG mimetiza a lactose para inativar o repressor lac, permitindo a expressão da RNA polimerase T7. No plasmídeo, a expressão do DNA alvo é regulada por dois promotores T7 convergentes. Consequentemente, as sequências de sentido e anti-sentido são transcritas levando à expressão do dsRNA.
Finalmente, o verme usa as informações de sequência do dsRNA ingerido para regular negativamente os mRNAs endógenos com sequências complementares. Neste experimento, prepararemos placas de RNAi com E. coli transgênica para alimentação de C. elegans.
- Para as placas de RNAi, carregue as placas de 6 centímetros com ágar NGM contendo IPTG e carbenicilina. Deixe secar por 24 a 48 horas em temperatura ambiente no escuro. Em seguida, transfira-os para 4 graus Celsius por até 14 dias.
Em seguida, placas seletivas contendo carbenicilina e tetraciclina com clones de bactérias RNAi com plasmídeo L4440 carregando o gene lin-53. Use um padrão de listras trifásicas e certifique-se de colocar um controle vetorial vazio. Em seguida, aumente as placas durante a noite a 37 graus Celsius.
No dia seguinte, escolha pelo menos três colônias individuais e inocule cada uma delas em um tubo de cultura separado com 2 mililitros de LB suplementado com carbenicilina, mas não tetraciclina. Planeje ter três culturas saudáveis por condição.
Em seguida, cultive as culturas durante a noite a 37 graus Celsius até atingirem uma densidade óptica de 600 nanômetros de 0,6 a 0,8. Em seguida, adicione 500 microlitros de cada cultura bacteriana a uma placa de RNAi de ágar NGM de 6 centímetros. Incube as placas durante a noite em temperatura ambiente no escuro.
Este artigo descreve um método para induzir interferência por RNA (RNAi) em C. elegans utilizando bactérias que expressam RNA de fita dupla (dsRNA). O protocolo envolve o preparo de placas de RNAi com E. coli transgênica e a alimentação dos vermes com essas placas para reduzir a expressão dos RNAs mensageiros-alvo.
A alimentação com RNAi em C. elegans utilizando E. coli modificada geneticamente permite um silenciamento gênico rápido e escalonável para genômica funcional e validação de alvos na fase inicial de descoberta. Esta abordagem auxilia na redução de riscos mecanicistas ao permitir a investigação direta da função gênica em um contexto de organismo inteiro. O método situa-se na intersecção entre validação de alvos e desenvolvimento de ensaios, proporcionando confiança preditiva para triagem subsequente e pesquisas translacionais.
Este método de alimentação com RNAi integra-se ao continuum de descoberta, desde a validação inicial do alvo até o desenvolvimento de ensaios e modelos pré-clínicos.
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Última atualização: 29 agosto 2026