RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
pt_BR
Menu
Menu
Menu
Menu
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
- Transfira um peixe anestesiado com tricaína para uma esponja úmida com o lado dorsal voltado para cima. Coloque a esponja que transporta o peixe sob um microscópio. Posicione uma agulha de microinjeção em um ângulo de 45 graus do eixo do corpo próximo ao músculo dorsal.
Em seguida, localize o local na frente da barbatana dorsal que não esteja coberto de escamas, onde você pode inserir a agulha sem aplicar muita força. Em seguida, insira suavemente a agulha e injete lentamente o composto de interesse junto com um marcador como o vermelho de fenol no músculo.
Se o composto de interesse contiver material genético, eletropore as células colocando eletrodos em ambos os lados do local da injeção e administrando a corrente. A corrente torna as células musculares permeáveis e capazes de absorver eficientemente o material genético. Após o procedimento, transfira imediatamente o peixe para um tanque de recuperação. No protocolo a seguir, realizaremos uma injeção intramuscular em um peixe-zebra adulto para administrar uma vacina de DNA contra micobacteriose.
Para manter o peixe em uma posição fixa durante a injeção, use um pedaço de esponja com uma ranhura cortada no meio como acolchoamento. Mergulhe bem a esponja na água do sistema e coloque-a em uma placa de Petri. Usando uma colher de plástico, transfira um peixe-zebra anestesiado para a esponja úmida com o lado ventral do peixe voltado para baixo no sulco. Sob o microscópio, coloque a agulha em um ângulo de 45 graus próximo ao músculo dorsal do peixe-zebra. Em seguida, encontre o pequeno ponto sem escamas na frente da barbatana dorsal e empurre a agulha para dentro do músculo.
Se alguma resistência for sentida, tente um local adjacente. Use um pedal para injetar gradualmente a solução de plasmídeo no músculo. Sob o microscópio, o vermelho de fenol deve ser visível ao entrar no tecido muscular.
Eletroporar o peixe imediatamente após a injeção, colocando os eléctrodos do tipo pinça de cada lado do local de injecção. Pressione o botão Iniciar no eletroporador e dê a ele seis pulsos de 40 volts e 50 milissegundos. Em seguida, transfira suavemente o peixe para um tanque de recuperação. Finalmente, depois de anestesiar os peixes de acordo com o protocolo de texto, use uma luz ultravioleta para ver a expressão do EGFP perto do local da injeção.
Related Videos
10:53
Related Videos
17.7K Views
11:16
Related Videos
11.1K Views
11:31
Related Videos
8.1K Views
04:50
Related Videos
25.6K Views
09:19
Related Videos
58.9K Views
02:53
Related Videos
8.4K Views
02:56
Related Videos
2.5K Views
07:34
Related Videos
9.5K Views
08:09
Related Videos
10.2K Views
05:39
Related Videos
12.5K Views