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- Comece com uma suspensão de células de leucemia contendo a densidade celular desejada. Centrifugar e ressuspender as células num meio de cultura contendo soro. A adição de soro promove o crescimento celular contínuo e as células se movem pelas diferentes fases do ciclo celular. Dilua as células em uma solução de marcação de bromodeoxiuridina, ou BrdU, e cultive-as em condições fisiológicas pela duração necessária.
As células na síntese ou fase S absorvem BrdU - um análogo da timidina - que substitui a timidina durante o processo de replicação do DNA. Centrifugue as células para remover o excesso de BrdU e ressuspenda as células em um meio adequado. Transfira as células para uma placa de poços múltiplos. Permita que as células cresçam em condições fisiológicas por diferentes períodos de tempo.
Em vários períodos de tempo, as células progridem através do restante das fases S, G2, mitose e G1 e entram no próximo ciclo celular, permitindo a estimativa da proliferação celular. Realize a coloração de anticorpos para marcar BrdU com anticorpo fluorocromo e medir a proliferação celular usando citometria de fluxo.
Dentro do citômetro de fluxo, os fluorocromos absorvem a energia do laser e fluorescem. O número de células em proliferação se correlaciona diretamente com a fluorescência observada. No protocolo de exemplo, demonstraremos a marcação de pulso de células de leucemia linfoblástica aguda.
- Este protocolo usa a linha celular de leucemia linfoblástica aguda, NALM6, mas pode ser aplicado a qualquer linha celular não aderente. Manter as células NALM6 em frascos de cultura T-75 em RPMI completo a 37 graus Celsius em 5% de dióxido de carbono no ar. Depois de coletar as células e realizar uma contagem de células, ressuspenda as células em RPMI completo em 2 vezes 10 elevado a 6 células por mililitro.
Dilua as células 1 em 2 com BrdU Complete RPMI para produzir uma concentração celular final de 1 vezes 10 elevado a 6 células por mililitro. Manuseie o BrdU com cuidado, pois é um potencial mutagênico e teratogênico. Incube a 37 graus Celsius com 5% de dióxido de carbono por 45 minutos.
Em seguida, dilua as células 1 em 10 com RPMI completo. Centrifugar a 150 vezes G durante cinco minutos e eliminar cuidadosamente todo o sobrenadante. Ressuspenda as células em um pequeno volume de RPMI completo, faça uma contagem de células e ajuste a concentração de células para 1 vezes 10 elevado a 6 células por mililitro. Pipete 1 mililitro de células em cada poço de uma placa de 48 poços.
Pipete 1 mililitro de DPBS em qualquer poço desocupado para obter resultados mais reprodutíveis. Incube a 37 graus Celsius em 5% de dióxido de carbono no ar pelos pontos de tempo desejados, dependendo do que o projeto experimental pretende medir. Quando a incubação estiver concluída, transfira todas as células para tubos FACS.
Enxágue cada poço sequencialmente com volumes de 1 mililitro de PBS até um volume total final de 5 mililitros. Centrifugue a 150 vezes G por cinco minutos e remova cuidadosamente todo o sobrenadante. As células agora estão prontas para a coloração, que deve ser realizada imediatamente. Se for necessária coloração superficial, ela deve ser realizada agora, antes da fixação.