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- Os fatores de transcrição são proteínas que se ligam a um local específico no DNA para regular a expressão gênica. Erros nos fatores de transcrição alteram essa atividade, levando à superexpressão de genes, o que causa câncer. Para entender o papel dos fatores de transcrição e da regulação gênica, podemos realizar o ensaio de imunoprecipitação da cromatina ou CHIP, e o cisalhamento da cromatina é uma etapa importante no fluxo de trabalho do CHIP.
Para cisalhamento da cromatina, estabilize o complexo DNA-proteína adicionando formaldeído. O formaldeído liga proteínas à sequência de DNA associada, formando ligações covalentes. Em seguida, use um tampão de lise adequado para lisar as células para liberar cromatina contendo os complexos DNA-proteína reticulados e centrifugar. Cisalhe a cromatina usando a enzima nuclease microcócica. Esta enzima cliva a cromatina entre os nucleossomos e digere as extremidades soltas do DNA. Centrifugue a mistura e recolha o sobrenadante.
Carregue o sobrenadante no gel de agarose TBE para analisar o tamanho apropriado dos fragmentos de DNA. Aplique um campo elétrico através do gel, o que faz com que o DNA da cromatina carregado negativamente se mova em direção ao ânodo. Fragmentos menores se movem mais para baixo no gel. A cromatina cisalhada aparece como um esfregaço no gel. No protocolo a seguir, cisalharemos a cromatina da linha celular de leucemia mielóide crônica usando sonicação.
- Para começar, encha um tubo de 1,5 milímetro com 1 mililitro de formaldeído a 37%. Em seguida, encha outro tubo de 1,5 mililitro com 1 mililitro de glicina molar 1,25 e um tubo de 5 mililitros com 4 mililitros de PBS. Em seguida, após a estimulação das células, gire as células de acordo com o protocolo de texto e ressuspenda as células em 500 microlitros de PBS e coloque o tubo em uma caixa cheia de gelo. Adicione 13,5% de microlitros de formaldeído a 37% às células e misture pipetando para cima e para baixo.
Em seguida, incube a suspensão à temperatura ambiente. Em seguida, adicione 57 microlitros de glicina 1,25 molar para interromper a fixação e deixe essa suspensão incubar em temperatura ambiente por cinco minutos. Imediatamente após o período de incubação, colocar as células no gelo e centrifugar as células a 500 vezes g durante cinco minutos a 4 graus Celsius. Em seguida, aspire o sobrenadante. Em seguida, lave as células duas vezes com 1 mililitro de PBS gelado a 200 vezes g por cinco minutos a 4 graus Celsius e remova o sobrenadante. Ressuspenda o pellet celular em 5 mililitros de tampão de lise-1 pipetando para cima e para baixo.
Em seguida, coloque as amostras no gelo e incube-as agitando por 10 minutos. Depois disso, centrifugue os tubos a 500 vezes g por cinco minutos a 4 graus Celsius. Em seguida, use a pipeta para remover cuidadosamente o sobrenadante. Homogeneizar as células em 5 mililitros de tampão de lise-2 e pipetar para cima e para baixo para misturar. Em seguida, incube as células no gelo por 10 minutos com agitação. Após o período de incubação, centrifugar os tubos a 500 vezes g durante cinco minutos a 4 graus Celsius e remover cuidadosamente o sobrenadante.
Em seguida, ressuspenda o pellet celular no tampão de cisalhamento-1 com inibidor de protease 1X. Em seguida, incube a suspensão celular no gelo por 10 minutos. Transfira 140 microlitros da suspensão celular para tubos sonicadores, tomando cuidado para evitar a formação de bolhas de ar. Coloque os tubos em um ultrassom focalizado a 7 graus Celsius e cisalhe por dez a sete minutos e meio. Transfira a suspensão celular para tubos de 1,5 mililitro. Centrifugue as amostras a 15.700 vezes g por 10 minutos a 4 graus Celsius e colete o sobrenadante em um novo tubo.