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- O tratamento quimioterápico para tumores geralmente tem como alvo células altamente proliferativas, deixando para trás um pequeno subconjunto da população de células-tronco, levando à recapitulação do tumor. Essas células-tronco são chamadas de população lateral. Como a população lateral carece de marcadores celulares específicos, usamos um ensaio de efluxo de corante para isolá-los de outras células tumorais.
Para começar, adicione corante Hoechst às células tumorais isoladas do peixe-zebra. Hoechst entra no núcleo e se liga à região rica em A-T no sulco menor do DNA. A população lateral de células tem uma concentração maior de transportadores ABC na superfície, levando ao rápido efluxo do corante fora da célula, exibindo baixa fluorescência.
Pegue outro frasco de células tumorais tratadas com Hoesct e adicione verapamil a ele. Este frasco atua como um controle, pois o verapamil bloqueia os transportadores ABC causando uma redução no efluxo de hoechst, aumentando assim a fluorescência na população lateral.
Incube as células de controle e de amostra no escuro. Em seguida, contra-core as células com iodeto de propídio que entram exclusivamente no núcleo das células mortas e se intercalam entre as bases do DNA, colorindo as células mortas de vermelho. Por fim, classifique as células usando um classificador de células ativado por fluorescência. No protocolo a seguir, isolaremos a população lateral de células tumorais do peixe-zebra.
- Antes da coloração celular, dilua o corante Hoechst em água livre de nuclease para obter um miligrama por mililitro de solução de trabalho. Armazene a solução preparada coberta com papel alumínio a 4 graus Celsius e, em seguida, dissolva 49,1 miligramas de verapamil em um mililitro de DMSO para obter uma solução inibidora de 100 micromolares.
Em seguida, prepare a amostra adicionando FBS / PBS 2,5 microlitros de DMSO, 15 microlitros de um miligrama por mililitro de corante Hoechst e 10 às seis células tumorais a um tubo FACS com um volume final de um mililitro.
Para preparar o controle, adicione FBS / PBS, 2,5 microlitros de verapamil 100 milimolares, 15 microlitros de um miligrama por mililitro de corante Hoechst. Adicione 10 às 6 células tumorais, com um volume final de um mililitro.
Incubar a amostra e o controlo num banho-maria a 28 graus Celsius no escuro durante 120 minutos. Após a incubação, coloque as células imediatamente no gelo e mantenha-as no escuro.
Centrifugue as células a 300 vezes G, 4 graus Celsius por seis minutos. Em seguida, remova o sobrenadante e lave as células com um mililitro de FBS / PBS. Gire as células a 300 vezes G, 4 graus Celsius por seis minutos mais uma vez.
Uma vez que as células são peletizadas, remova o sobrenadante e ressuspenda as células em um mililitro de FBS / PBS. Manter as amostras a 4 graus Celsius, até à triagem das células. 15 minutos antes da classificação das células, adicione dois microlitros de um miligrama por mililitro de solução estoque de iodeto de propídio para cada mililitro da suspensão celular. Em seguida, bata bem as amostras.
Analise as suspensões de células T-ALL de peixe-zebra coradas, usando um classificador de células ativado por fluorescência. Excite as amostras com um laser UV para análise de corante Hoechst e um laser de 488 nanômetros para a detecção de iodeto de propídio ou células T-ALL positivas para GFP.
- O número de células, a concentração de corante, a temperatura de incubação e o comprimento de incubação podem precisar ser otimizados para cada tipo de célula diferente usado, e as alterações em cada uma dessas condições podem alterar drasticamente os resultados do ensaio.