Enciclopédia de Experimentos da JoVE
Neurociência
0 visualizações • 2:24 min. • August 29th, 2025
Comece com uma configuração de microinjeção estéril cheia de água que consiste em uma seringa conectada a um microinjetor por meio de um tubo de plástico.
Retraia ligeiramente o êmbolo da seringa para criar uma bolha de ar na tubulação.
Mergulhe a ponta do microinjetor no agente terapêutico e puxe o êmbolo para aspirar a solução.
Pegue um rato acordado com uma touca protetora e duas cânulas guia pré-implantadas inseridas nas regiões-alvo específicas do cérebro.
Segure o peito do rato contra o peito do experimentador para minimizar o estresse.
Limpe a área ao redor das cânulas com uma solução estéril.
Insira os microinjetores carregados com drogas nas cânulas guia para alcançar os locais alvo.
Inicie a infusão do medicamento e monitore sua entrega rastreando o movimento da bolha.
Quando a injeção estiver concluída, segure brevemente e retire os microinjetores. Insira os obturadores nas cânulas para evitar contaminação.
Este método permite a entrega direcionada de agentes terapêuticos no cérebro de roedores.
Puxe o êmbolo da seringa para trás 0,2 microlitros para criar uma bolha entre a água estéril e o tubo PE 20 e a solução a ser injetada.
Depois disso, coloque o microinjetor no reagente a ser injetado e puxe lentamente o êmbolo da seringa para o batente traseiro. Para preparar o animal para a injeção, segure o peito do rato contra o peito do experimentador. Limpe a área ao redor da cânula com um aplicador de algodão embebido em Betadine.
Limpe a tampa da cabeça três vezes com Betadine e depois esfregue com etanol duas vezes. Em seguida, coloque o microinjetor cheio na cânula. Pressione start na bomba de microinjeção e monitore o movimento da bolha.
Quando a injeção estiver concluída, remova o microinjetor da cânula e substitua por obturador.