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Comece com a fração total da membrana de uma bactéria Gram-negativa, incluindo vesículas de membrana interna e externa, suspensa em uma sacarose de baixa densidade que preserva a integridade estrutural.
Para separar as vesículas de membrana, adicione sequencialmente soluções de sacarose de alta e média densidade em um tubo de ultracentrífuga.
Em seguida, adicione a fração de membrana e a sacarose de baixa densidade para criar um gradiente de sacarose descontínuo.
Ultracentrífuga para separar vesículas com base em suas densidades.
As vesículas de membrana interna menos densas formam uma camada no topo.
As vesículas de membrana externa mais densas, ricas em lipopolissacarídeos e proteínas, formam uma banda na interface de soluções de sacarose de média e alta densidade.
Recolha a camada interna da membrana e descarte a solução gradiente, deixando uma pequena quantidade.
Em seguida, colete a camada externa da membrana.
Adicione um buffer de armazenamento a cada fração para estabilização.
Centrifugue para separar as vesículas e remover o sobrenadante.
Ressuspenda as vesículas de membrana purificadas, homogeneize e armazene-as em baixas temperaturas para análise posterior.
Para preparar o gradiente de sacarose, segure um tubo de polipropileno ou Ultra-clear Open-Top em uma posição ligeiramente inclinada.
Adicione lentamente dois mililitros da solução de sacarose de maior densidade. Em seguida, adicione quatro mililitros da solução de sacarose de baixa densidade. Ao preparar o gradiente de densidade, adicione a solução de sacarose lentamente para evitar misturar as camadas.
As camadas de sacarose devem ser ligeiramente visíveis e parecer geralmente definidas. Em seguida, adicione a fração total da membrana que foi previamente ressuspensa em um mililitro de solução de sacarose isopícnica de baixa densidade. Finalmente, encha o restante do tubo adicionando aproximadamente seis mililitros da solução de gradiente de sacarose isopícnica de baixa densidade.
Ultracentrifugar as amostras usando um rotor de balde oscilante a 288.000 vezes G e quatro graus Celsius por 16 a 23 horas. Corte a ponta de uma pipeta P1000 a cerca de cinco mililitros da ponta. Após a conclusão da centrifugação, use a pipeta para remover a camada marrom superior do tubo.
Transferir esta camada, que contém a fracção interna da membrana, para um frasco de policarbonato para ultracentrifugação. Deixe cerca de dois mililitros da solução de sacarose acima da interface entre a sacarose a 53% e a sacarose a sacarose a 73% para garantir que a fração inferior branca da membrana externa não contamine a fração da membrana interna. Novamente usando uma ponta de pipeta P1000 com a extremidade removida, remova a camada externa da membrana e transfira-a para um frasco de policarbonato.
Preencher o vazio restante do frasco de policarbonato com tampão de armazenamento de membrana isolado e misturar por inversão ou pipetagem. Manter as amostras no gelo. Para coletar as membranas, ultracentrifugue os frascos de policarbonato a 184.500 vezes G e quatro graus Celsius por uma hora.
Por fim, descarte os sobrenadantes e adicione 500 a 1.000 microlitros de tampão de armazenamento. Ressuspenda as membranas por homogeneização Dounce. Coletar as amostras em tubos de microcentrífuga de dois mililitros.