Preparação de E. coli Spheroplasts

0 vistas4:30 min • September 26th, 2025

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Pegue uma cultura de E. coli .

Dilua a cultura em meio fresco e incube-a para promover a divisão bacteriana.

Em seguida, dilua a cultura em meios contendo um inibidor da divisão bacteriana e incuba.

As bactérias continuam a crescer sem se dividir, formando filamentos alongados.

Transfira a cultura para um tubo novo e, em seguida, centrifugue para pellet os filamentos e remova o sobrenadante.

Lave o pellet com um estabilizador osmótico para evitar a lise do esferoplasto. Remova a solução.

Adicione tampão, lisozima, DNase e um agente quelante sequencialmente. Incubar.

O agente quelante desestabiliza a membrana externa do filamento.

A lisozima degrada a camada de peptidoglicano exposta, fazendo com que os filamentos percam a forma e formem estruturas esféricas chamadas esferoplastos.

Além disso, a DNase degrada o DNA contaminante liberado de filamentos danificados.

Adicione o estabilizador osmótico novamente, misture e incuba.

Transferir a suspensão para um tubo contendo tampão e centrifugação.

Remova o excesso de sobrenadante e ressuspenda os esferoplastos no tampão para análise a jusante.

Para configurar uma cultura durante a noite, use uma ponta de micropipeta estéril para transferir uma única colônia bacteriana de uma placa de cultura de ágar sólido para um tubo de cultura de 14 mililitros, contendo dois a três mililitros de caldo de soja tripticase a três por cento, TSB, para uma incubação de 16 a 21 horas a 37 graus Celsius com agitação. Para preparar esferoplastos de E. coli Gram-negativos, dilua a cultura noturna na proporção de um para 100 e 25 mililitros de TSB em um frasco de 250 mililitros e retorne a bactéria à incubadora agitada por mais 2,5 horas. Quando a solução atingir uma densidade óptica de 0,5 a 0,8 a 600 nanômetros, diluir a cultura na proporção de um para dez em TSB fresco em um novo frasco de 250 mililitros para uma segunda incubação de 2,5 horas com uma concentração efetiva final de 60 microgramas por mililitro de cefalexina.

Produzir filamentos de célula única de cerca de 50 a 150 micrômetros de comprimento, conforme visualizado sob um microscópio óptico com uma ampliação de 1000x. Centrifugar a solução bacteriana para colher os filamentos e decantar o sobrenadante. Lave os filamentos com a adição suave de um mililitro de sacarose 0,8 molar, tomando cuidado para não perturbar o pellet.

Após um minuto, rejeitar o sobrenadante sem perturbar o sedimento e adicionar os reagentes indicados pela respectiva ordem aos filamentos. Após dez minutos à temperatura ambiente, adicione gradualmente um mililitro da solução A durante um período de um minuto, agitando suavemente a solução com a mão. Incubar a solução durante quatro minutos à temperatura ambiente e, em seguida, dividir a suspensão do filamento em duas alíquotas iguais entre dois tubos cónicos de 15 mililitros contendo sete mililitros de solução B a quatro graus Celsius. Em seguida, peletize os filamentos por centrifugação e use uma pipeta sorológica para remover cuidadosamente todos, exceto um a dois mililitros do sobrenadante, sem perturbar os pellets.

Use uma micropipeta p1000 para ressuspender suavemente os pellets. Verificar uma pequena alíquota da amostra para a formação de esferoplastos por microscopia de luz. O esferoplasto pode então ser armazenado a menos 20 graus Celsius por até uma semana ou até que tenha passado por três ciclos de congelamento e descongelamento.

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Última atualização: 15 agosto 2026