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Comece com uma configuração de ensaio contendo frascos colocados dentro de uma câmara anaeróbica.
Cada frasco contém meios suplementados com nitrato de sódio, íons de mercúrio e concentrações variadas de sulfato de magnésio.
Gire a configuração para misturar os componentes e, em seguida, incuba.
Durante a incubação, o sulfato de magnésio promove a formação de complexos de mercúrio não biodisponíveis, reduzindo os íons de mercúrio livres e biodisponíveis de maneira dependente da concentração.
Em seguida, adicione biossensores induzidos, bactérias geneticamente modificadas carregando um plasmídeo e misture.
O plasmídeo contém um regulador transcricional responsivo ao mercúrio e um promotor ligado a um gene repórter fluorescente.
Em condições anaeróbicas, as bactérias utilizam nitrato para respirar.
Os íons de mercúrio livres entram nas células, ligam-se ao regulador transcricional e ativam o gene fluorescente, produzindo proteínas fluorescentes.
Transfira alíquotas de cada frasco para injetáveis para uma placa de vários poços.
Usando um leitor de placas, meça a intensidade da fluorescência.
Uma diminuição na fluorescência com o aumento das concentrações de sulfato de magnésio confirma a capacidade do biossensor de detectar alterações no mercúrio biodisponível.
Antes de iniciar o experimento, verifique o monitor anaeróbico para garantir que não haja oxigênio na câmara anaeróbica. Projete o layout da placa de acordo com um modelo de 96 poços. Para executar experimentos em réplicas técnicas de três, isso permitirá 32 tratamentos diferentes, que são melhor representados com uma grade de quatro por oito para configurar os frascos.
Configure a grade de quatro por oito de acordo com o layout da placa de ensaio. Em seguida, coloque frascos padrão de PTFE de 7 mililitros na bandeja. Os frascos para injetáveis só devem ser manuseados manipulando a parte externa do frasco.
Adicionar o volume do meio de exposição em cada frasco correspondente a cada tratamento. A cada frasco, adicionar o volume correspondente da variável química a ser testada de acordo com o layout da placa. Agora adicione nitrato a cada frasco para que a concentração final seja de 200 micromolar.
Exclua esta etapa para brancos de tratamento de biossensor constitutivo.
Para adicionar mercúrio aos frascos, primeiro pegue o caldo micromolar de quatro a oito e agite bem. Diluir a solução e o meio de exposição num frasco de PTFE de 7 mililitros até uma concentração de 100 a 250 nanomolares para obter uma solução de mercúrio funcional.
A partir desta solução de trabalho, adicione mercúrio aos frascos necessários de acordo com o layout da placa. Depois de adicionar o mercúrio ou cádmio, agite manualmente a placa em um movimento orbital. O experimento pode ser pausado agora, dependendo do tempo necessário para o mercúrio ou o cádmio especiarem em solução.
Quando o experimento for retomado, pipete suavemente o estoque do biossensor para frente e para trás para garantir a homogeneidade. Em seguida, adicione 100 microlitros do estoque do biossensor a cada frasco e agite manualmente a placa como antes. Aqueça o leitor de placas a 37 graus Celsius e configure uma corrida cinética por dez horas com leituras a cada dois vírgula cinco a cinco minutos.
Um tremor orbital entre as leituras, configurou a corrida para fazer medições de fluorescência com uma excitação de fluorescência de 440 nanômetros e uma emissão de 500 nanômetros. Agora pipete 200 microlitros de cada frasco de PTFE na grade de quatro por oito nos poços correspondentes da placa de 96 poços.
Pipete para frente e para trás cinco vezes antes de transferir cada 200 microlitros. Coloque a placa de 96 poços na bandeja do leitor de placas. Em seguida, coloque a tampa na placa de 96 poços e comece o ensaio.