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Comece com uma cuveta refrigerada contendo uma suspensão de células bacterianas eletrocompetentes, que apresentam maior suscetibilidade à permeabilização membranar.
A suspensão também contém biomoléculas marcadas com fluoróforos orgânicos.
Aplique um pulso elétrico de alta voltagem para criar poros temporários na membrana, permitindo a entrada da biomolécula no citoplasma.
Adicione um meio rico em nutrientes e transfira as células para um tubo. Incubar para promover a reparação da membrana.
Centrifuge as células e descarte o sobrenadante contendo biomoléculas não internalizadas.
Resuspenda as células em um tampão rico em sal contendo um detergente para desprender as biomoléculas aderidas à superfície.
Centrifuge novamente, descarte o sobrenadante e ressuspenda as células no buffer.
Transfira a suspensão para um filtro e centrífuga para descartar o fluxo que contenha quaisquer biomoléculas não internalizadas. Depois, enxágue as células com um novo tampão e as ressuspenda.
Monte as células em uma base de agarose e coloque uma cobertura de cobertura. As bactérias marcadas fluorescente estão prontas para visualização.
Começando com um estoque de biomoléculas fluorescentes preparadas em um tampão de baixa força iônica, transfira até cinco microlitros das biomoléculas para uma alíquota de 20 microlitros de bactérias competentes ou 50 microlitros de células de levedura competentes. A quantidade de biomoléculas fluorescentes incubadas com as células está diretamente correlacionada com a quantidade de biomoléculas internalizadas por célula após a eletroporação.
Incube a mistura no gelo por até 10 minutos. Ao mesmo tempo, selecione uma cubeta de eletroporação com espaçamento apropriado dos eletrodos e resfrie no gelo. Transfira a mistura celular para a cuveta pré-resfriada.
Bata suavemente na cuveta algumas vezes para remover qualquer bolha da solução. Remova qualquer umidade da cubeta com um papel toalha e coloque a cubeta no eletroporador. Aplique um pulso de alta voltagem às células.
Logo após esse processo, verifique se a constante de tempo exibida no eletroporador está entre quatro e seis milissegundos. Constantes de tempo mais baixas geralmente se devem à presença excessiva de sal ou bolhas dentro da cubeta, e isso pode diminuir ou inibir completamente a absorção de biomoléculas pelas células. Pulsos de voltagem mais altos aumentam a carga da célula, mas também podem afetar a viabilidade da célula.
Imediatamente após a eletroporação, adicione 500 microlitros de meio rico e transfira as células para um tubo novo de 1,5 mililitro. Deixe a membrana celular se recuperar incubando as bactérias a 37 graus Celsius ou a levedura a 29 graus Celsius por 2 a 10 minutos. Após a incorporação da biomolécula e recuperação do crescimento, centrifuge as células por um minuto em uma centrífuga pré-resfriada a quatro graus Celsius e descarte o sobrenadante.
Resuspenda o pellet em 500 microlitros de buffer e repita os processos de spin down, remoção do sobrenadante e ressuspensão do buffer mais três vezes. Essas etapas de lavagem removem todos os vestígios de biomoléculas não internalizadas da suspensão celular.
No caso da internalização de proteínas marcadas, uma etapa adicional de purificação é realizada pipetando a suspensão celular em um tubo de 1,5 mililitro equipado com um filtro de membrana de 0,22 micrômetro por cima. Separe as células do tampão por centrifugação, garantindo que haja líquido suficiente acima do filtro para evitar que as células sequem, e descarte a fração de fluxo contínuo. Abaixo do filtro, adicione 500 microlitros de PBS fresco sobre as células e repita a combinação de um spin down seguido de uma adição de PBS novo mais duas vezes.
Faça uma centrifugação final a 3.300 g por um minuto para remover a lavagem PBS anterior. Ressuspenda as células com 150 microlitros de PBS.
Por fim, remova o deslize superior da tampa da almofada de agarose já feita. Carregue as células na base pipetando 10 microlitros da suspensão da célula no sentido da queda. Após colocar uma nova capa limpa sobre a almofada de agarose, as células sanduíche estão prontas para microscopia fluorescente.