Detecção de sacaribactérias em cultura binária usando reação em cadeia da polimerase

0 vistas2:06 min • February 26th, 2026

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Comece com uma cultura de Actinomyces infectada por Saccharibacteria.

As sacaribactérias, uma bactéria parasita ultrapequena, e seu hospedeiro formam uma cultura binária.

Adicione uma aliquota da cultura infectada a um tubo de PCR contendo reagentes de amplificação com corante de rastreamento de eletroforese e primers específicos para Saccharibacteria.

Coloque o tubo em um termociclador com condições de PCR definidas.

Durante a desnaturação inicial, o calor lisa Saccharibacteria, liberando DNA genômico. Os actinomyces permanecem intactos devido às paredes celulares rígidas, limitando a liberação do DNA do hospedeiro.

O calor então desnatura as cadeias de DNA das Saccharibacterias e ativa a polimerase Taq.

Durante o recozimento, os espoletas se ligam a sequências complementares no genoma de Saccharibacteria.

Em extensão, a Taq polimerase adiciona dNTPs aos primers, sintetizando novas fitas de DNA.

Coloque o produto de PCR amplificado em um gel de agarose pré-tingido com um corante que se liga aos fragmentos de DNA.

Faça eletroforese e visualize o gel sob luz UV.

Uma faixa de amplicão específica para Saccharibacteria confirma a interação hospedeiro-parasita na cultura binária.

Aliquota 24 microlitros da mistura master de PCR em um tubo de PCR de 0,2 mililitros. Em um microlitro de cultura infectada por sacaribactérias, e coloque o tubo em um termociclador.

Configure o programa de PCR conforme descrito no manuscrito do texto. Carregue e execute os produtos de PCR em um gel Agros a 1%. Uma faixa de aproximadamente 600 bases confirmará a presença de sacaribactérias.

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Última atualização: 1 agosto 2026