Um ensaio rápido baseado em imagem para triagem de virulência bacteriana induzida por superfícies

0 vistas2:33 min • February 26th, 2026

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Comece com placas contendo bactérias presas à superfície e bactérias planctônicas ou flutuantes livres.

Adicione células de ameba a ambas as amostras.

Coloque uma almofada de agarose contendo Calcein-AM, um corante permeável às células, sobre cada amostra.

Remova o excesso de líquido, deixe secar e incube as placas.

Na placa com bactérias presas à superfície, o contato superficial aumenta os genes de virulência, expressando toxinas.

Essas toxinas perturbam a membrana da ameba e mudam sua forma.

A membrana da ameba danificada permite que mais calceína-AM entre no citoplasma, onde esterases intracelulares as clivam em calcina fluorescente, levando ao seu acúmulo.

Em contraste, bactérias planctônicas, sem contato superficial, permanecem não virulentas, mantendo as membranas da ameba intactas. Isso reduz a entrada de Calcein-AM na ameba, limitando o acúmulo de calceína fluorescente.

Amebas saudáveis também engolem as bactérias não virulentas.

Sob um microscópio fluorescente, células de ameba brilhantes e arredondadas indicam interação bacteriana virulenta, enquanto amebas ténues e amorfas indicam interação bacteriana não virulenta.

Para testar a virulência das células bacterianas presas à superfície, adicione 10 micrólitros de células de ameba das células bacterianas previamente obtidas na superfície.

Para isolar as células planctônicas, transfira 10 microlitros da cultura para uma placa de Petri fresca.

Em seguida, testar a virulência das células planctônicas misturando 10 microlitros de células de ameba com as bactérias planctônicas previamente obtidas.

Imediatamente coloque a pequena almofada de ágar sobre a mistura apropriada de bactérias e amebas na superfície da placa de Petri.

Depois, remova o excesso de líquido pipetando suavemente qualquer líquido em excesso e deixe o prato secar por 20 minutos.

Cubra o recipiente com a tampa e deixe-o incubar em temperatura ambiente por mais 40 minutos. Por fim, use um microscópio de fluorescência para adquirir imagens de pelo menos 100 células de ameba.

10:55

Ensaios para estudar o papel do vitronectina na adesão bacteriana e resistência de soro

Vídeos relacionados

0 Visualizações

07:07

Aderência de bactérias para plantar superfícies medidas em laboratório

Vídeos relacionados

0 Visualizações

04:56

Análise de Infecção de Células Epiteliais com Shigella

Vídeos relacionados

0 Visualizações

03:57

Dish microtitulação Assay formação de biofilme

Vídeos relacionados

0 Visualizações

02:46

Ensaio de enxame para visualização da motilidade da superfície bacteriana

Vídeos relacionados

0 Visualizações

03:57

Um ensaio para determinar a iniciação do biofilme polimicrobiano em células infectadas por vírus

Vídeos relacionados

0 Visualizações

08:45

Um Ensaio visual para o Monitor T6SS mediada Competição bacteriana

Vídeos relacionados

0 Visualizações

10:39

Medidas de ruptura vacuolar única célula causadas por patógenos intracelulares

Vídeos relacionados

0 Visualizações

07:35

Preparação, Imaging, e quantificação de Motilidade Ensaios superfície da bactéria

Vídeos relacionados

0 Visualizações

09:09

High Throughput, em tempo real, Teste Dual-leitura dos intracelular Actividade Antimicrobiana e citotoxicidade celular eucariótica

Vídeos relacionados

0 Visualizações

Última atualização: 15 agosto 2026