Imagem de Alta Capacidade de Infecção Intracelular por Brucella abortus em Células Epiteliais do Hospedeiro

0 vistas3:43 min • March 31st, 2026

Comece pelas células epiteliais nas quais a expressão da proteína adaptadora de interferon, um mediador chave da imunidade inata, foi reduzida, tornando as células mais suscetíveis à infecção por Brucella .

Substitua o meio por um meio de infecção contendo Brucella abortus que expressa proteína fluorescente verde, um patógeno intracelular facultativo, na concentração desejada.

Centrifuge a placa para promover o contato entre bactérias e células hospedeiras, depois incube para permitir a internalização bacteriana.

Lave as células com um meio contendo soro e trate-as com um antibiótico para eliminar bactérias extracelulares.

Incube ainda mais para permitir que Brucella se multiplique intracelularmente.

Lave as células com tampão e fixe-as com paraformaldeído para preservar as estruturas intracelulares.

Enxágue o excesso de fixador. Depois, adicione um tampão suplementado com detergente para permeabilizar as células.

Lave o detergente residual, depois adicione DAPI para manchar os núcleos e faça uma lavagem final.

Usando um microscópio automatizado, adquira imagens de alta capacidade da infecção por Brucella nas células epiteliais do hospedeiro.

Usando uma lavadora automática de placas, troque o meio de transfecção por 50 microlitros de meio de infecção. Dentro do capô, transfira a placa para a gaiola da centrífuga e centrifuge a placa de 384 poços a 400 vezes g e quatro graus Celsius por 20 minutos.

Depois, use parafilme para selar a placa e incube-a em uma placa de alumínio pré-aquecida a 37 graus Celsius e 5% deCO2 por quatro horas. Após a incubação com a lavadora automática de placas, utilize DMEM com 10% de FCS contendo 100 microgramas por mililitro de Gentamicina ou GM para lavar as células e inativar bactérias extracelulares. Depois, use parafilme para selar a placa e coloque-a de volta sobre a placa de alumínio pré-aquecida na incubadora por mais 40 horas para o teste final.

Para consertar as células, primeiro use PBS para lavar os poços. Depois, troque o PBS por 50 microlitros de PFA a 3,7% em HEPES de 0,2 molar a pH 7,4 e incube as células em temperatura ambiente por 20 minutos.

Após a incubação, utilize 50 microlitros de PBS para trocar o meio de fixação. Para tingir as amostras com a lavadora automática de placas, comece usando 50 microlitros de 0,1% Triton X-100 em PBS por 10 minutos para permeabilizar as células.

Após usar PBS para lavar as células três vezes, adicione 50 microlitros de PBS com um micrograma por mililitro de DAPI e incube em temperatura ambiente por 30 minutos. Depois, use PBS para lavar as células três vezes antes de protegê-las da luz. Transfira a placa para o microscópio automático.

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Última atualização: 29 agosto 2026