Geração de células de câncer de próstata quimiorresistentes: um procedimento para obtenção de células cancerígenas resistentes a medicamentos in vitro

0 vistas4:33 min • April 30th, 2023

Para gerar células quimiorresistentes, comece tomando a suspensão de células de câncer de próstata humano em um frasco de cultura. Incubar o balão para facilitar a aderência celular e sua divisão para formar uma monocamada.

Suplementar as células com uma solução de medicamento anticancerígeno em uma concentração ideal e incubar. As moléculas da droga entram nas células e induzem a apoptose em células sensíveis.

Algumas células expressam transportadores especiais de efluxo de drogas ou bombas que removem periodicamente as drogas. Esse mecanismo impede o acúmulo de drogas, permitindo que essas células resistam ao efeito de drogas anticâncer e se tornem quimiorresistentes.

Aspire o meio contendo drogas e detritos da cultura. Suplemente com meios de crescimento frescos e sem drogas para apoiar o crescimento de células quimiorresistentes. Descarte o meio gasto. Tripsinize as células para separá-las do frasco de cultura e transferi-las para um tubo.

Centrifugue o tubo para peletizar as células. Remova o sobrenadante contendo tripsina. Ressuspenda as células em meios de crescimento frescos. Cultive as células em um novo frasco de cultura.

Posteriormente, repita as etapas de tratamento medicamentoso e cultura de células para expor as células quimiorresistentes a doses crescentes do mesmo medicamento anticâncer. Essa técnica rastreia a cultura eliminando todas as células sensíveis para gerar um conjunto de células sobreviventes altamente quimiorresistentes.

Para iniciar este procedimento, coloque as células DU145 ou 22Rv1 nos frascos quadrados de 150 centímetros contendo 20 mililitros de meio. Após 24 horas, quando as células estiverem em cerca de 70% a 80% de confluência, adicione docetaxel a 5 nanomolares.

Após 72 horas, aspire o meio contendo o medicamento e adicione um novo meio sem docetaxel. Troque o meio a cada 3 a 4 dias e aguarde de 1 a 2 semanas até que os clones apareçam no frasco. Aspire a mídia. Lave cuidadosamente as células com 15 mililitros de PBS e incuba-as com 4 mililitros de tripsina-EDTA a 0,05% por 3 a 5 minutos a 37 graus Celsius para separar as células da superfície do frasco. Em seguida, ressuspenda as células tripsinizadas do frasco usando 8 mililitros de meio fresco.

Agrupar as células de todos os frascos tratados e pellet-as por centrifugação. Depois disso, remova o sobrenadante. Ressuspenda o pellet celular em 20 mililitros de meio fresco e coloque as células em frascos quadrados de 150 centímetros.

Após 24 horas, quando as células estiverem em cerca de 70% a 80% de confluência, adicione 5 docetaxel nanomolar novamente. Repetir os procedimentos como indicado anteriormente até que os clones apareçam no balão. Em seguida, coloque as células em frascos quadrados de 150 centímetros novamente.

Após 24 horas, quando as células estiverem em cerca de 70% a 80% de confluência, trate-as com docetaxel 10 nanomolar. Repita as mesmas etapas de maneira crescente da dose de docetaxel e continue agrupando os clones sobreviventes após cada tratamento de concentração. No final do processo, você obterá um pool de células resistentes prontas para uso experimental.

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Última atualização: 22 agosto 2026