Purificação de peptídeos: uma técnica baseada em RP-HPLC para extrair peptídeos de lisados de proteínas digeridas

0 vistas3:21 min • April 30th, 2023

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Para isolar e purificar os peptídeos, comece com uma suspensão de lisado de proteína contendo uma mistura de peptídeos digeridos.

Trate a mistura com ácido trifluoroacético ou reagente à base de TFA. Este reagente aniônico ou carregado negativamente forma um complexo de pares iônicos com resíduos básicos ou carregados positivamente nos peptídeos, mascarando assim sua carga e melhorando a hidrofobicidade do peptídeo.

Agora, monte uma coluna de cromatografia líquida de alta eficiência de fase reversa, ou RP-HPLC, contendo uma fase estacionária porosa à base de sílica, imobilizada com ligantes hidrofóbicos não polares. Adicione um tampão de equilíbrio compatível com peptídeos à coluna para preparar a fase estacionária antes da aplicação da amostra.

Agora, coloque a amostra acidificada na coluna. Dentro da coluna, os peptídeos hidrofóbicos adsorvem seletivamente aos ligantes hidrofóbicos da fase estacionária. Passe um buffer de lavagem pela coluna para eluir quaisquer partículas não ligadas ou indesejadas.

Em seguida, passe um tampão de eluição orgânico menos polar, com alta hidrofobicidade, através da coluna. Devido à sua afinidade seletiva com o tampão de eluição, os peptídeos ligados são dessorvidos da matriz da coluna.

Recolha o eluato contendo peptídeos da coluna. Liofilizar o eluído para remover o teor de água e obter um pó seco de peptídeos puros e estáveis.

Para acidificar a amostra, adicione aproximadamente 20 microlitros de ácido trifluoroacético a 5%, ou TFA, por mililitro de lisado. Misture bem o tubo e use uma tira de pH para medir o pH. Se necessário, adicione 5% de TFA extra para ajustar o pH para 2,5. Em seguida, conecte a extremidade mais curta de uma coluna C18 a um coletor de vácuo. Depois de definir o vácuo entre 17 e 34 kPa, use 3 mililitros de acetonitrila 100% e uma pipeta de vidro para molhar a coluna.

Equilibre a coluna usando uma pipeta de vidro e aplicando duas alíquotas de 3 mililitros de 0,1% de TFA. Em seguida, coloque a amostra acidificada na coluna. Use três volumes de 3 mililitros de 0,1% de TFA para lavar a coluna. Em seguida, aplique 2 mililitros de ACN a 40% e TFA a 0,1% para eluir a amostra e colete duas frações de 2 mililitros em tubos de cultura de vidro. Com o parafilme, cubra os tubos de eluído e use uma agulha de calibre 20 para fazer três a cinco furos na tampa antes de liofilizar as amostras durante a noite.

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Última atualização: 22 agosto 2026