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Comece tomando uma suspensão de células receptoras cultivadas em um tubo. Completar o tubo com plasmídeos induzíveis contendo o gene de interesse. A expressão deste gene está sob o controle de uma sequência promotora a montante fundida a um operador de tetraciclina ou TetO, formando um elemento responsivo à tetraciclina ou TRE.
Além disso, adicione vetores reguladores de tetraciclina, cada um contendo um gene que codifica a proteína transativadora de tetraciclina recombinante ou tTA. Eletroporar a mistura célula-DNA para usar pulsos elétricos para facilitar a captação de plasmídeos pela célula.
Após a eletroporação, coloque as células em placas e incube pelo tempo desejado. Ao entrar no núcleo, o vetor de desligamento da tetraciclina expressa a proteína tTA. O tTA é uma proteína híbrida contendo um repressor Tet ou a porção TetR e um domínio transativador de transcrição VP16 viral.
A porção TetR se liga à sequência TetO do elemento TRE, enquanto o domínio VP16 permite que a RNA polimerase sintetize o mRNA a partir do DNA a jusante, levando à expressão gênica. Substitua o meio de crescimento na placa de cultura por meio contendo doxiciclina e incuba.
A doxiciclina - um análogo sintético da tetraciclina - liga-se à proteína TetR e altera sua conformação. Essa mudança interrompe a interação da proteína TetR com a sequência TetO, inibindo a expressão do gene alvo.
Semeie as células em placas de Petri de 1 x 106 células / cm2 em 100 milímetros, na presença de meio essencial mínimo completo. Cultive por 24 horas a 37 graus Celsius em 5% de dióxido de carbono com umidade. No dia seguinte, adicione 500 microlitros de meio completo sem antibiótico a cada poço de uma nova placa de 12 poços e pré-aqueça a placa a 37 graus Celsius por 30 minutos.
Durante esta incubação, adicione 1 micrograma do plasmídeo de resposta e 1 micrograma de vetor regulador a um tubo de 1,5 mililitro por poço. Lave as células epiteliais alveolares com 10 mililitros por poço de PBS de 37 graus Celsius sem cálcio ou magnésio e trate as células com 5 mililitros por poço de tripsina a 37 graus Celsius 0,05% por dois a quatro minutos na incubadora de cultura de células.
Quando as células se desprenderem, neutralize a tripsina com 10 mililitros por poço de meio completo sem antibiótico e colete as células em um novo tubo de 50 mililitros. Lave o prato com 4 mililitros de meio fresco para coletar as células restantes e sedimente as células por centrifugação.
Ressuspenda o pellet em 1 mililitro de PBS para contagem e centrifugue as células novamente. Ressuspenda o pellet a uma densidade de 4 x 107 células/ml de tampão de ressuspensão e adicione 4 x 105 células a cada tubo de plasmídeo e vetor com uma mistura suave. Coloque 1 tubo no dispositivo de eletroporação e encha o tubo com 3.5 mililitros de tampão eletrolítico.
Pressione totalmente o pistão para inserir uma ponta de eletrodo banhada a ouro em uma pipeta e misture suavemente o conteúdo do tubo. Aspire cuidadosamente as células com uma pipeta e insira a pipeta na estação de eletroporação até ouvir um clique. Selecione o protocolo de eletroporação apropriado para células epiteliais alveolares e pressione Iniciar na tela sensível ao toque.
Imediatamente após a transfecção, remova a pipeta e transfira as células para um poço da placa pré-aquecida de 12 poços. Quando todas as células tiverem sido eletroporadas e plaqueadas, coloque a placa na incubadora de cultura de células, substituindo o sobrenadante em cada poço por meio completo com antibióticos após dois dias. O sucesso da transfecção pode ser confirmado pela expressão de EGFP, conforme observado por microscopia de fluorescência ou citometria de fluxo usando um vetor controle.
Para inibir a transcrição do gene de interesse, 72 horas após a transfecção, substitua o sobrenadante por 1 mililitro por alvéolo de meio completo suplementado com 1 micrograma por mililitro de doxiciclina recém-preparada. Para avaliar a meia-vida do mRNA do gene de interesse, retorne a placa à incubadora de cultura de células de 15 minutos a 6 horas.
Lavando um bem com 1 mililitro de PBS gelado, antes de lisar as células com 500 microlitros de tampão de lise de um kit de extração de RNA de fenol-clorofórmio disponível comercialmente e agitar suavemente em cada ponto de tempo experimental. Em seguida, isole o RNA de acordo com as instruções do kit e determine o rendimento e a pureza do RNA por espectrofotometria a 230, 260 e 280 nanômetros.