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Os osteoclastos, macrófagos multinucleados, facilitam a reabsorção óssea - quebra do tecido ósseo e a liberação de minerais ósseos.
Para quantificar a reabsorção de osteoclastos in vitro, cultivar células mononucleares do sangue periférico humano no fator estimulador de colônias de macrófagos, M-CSF, contendo meios para diferenciação em células progenitoras de osteoclastos e fixação. Colha os progenitores dos osteoclastos e centrifugue.
Pipetar a suspensão celular ressuspensa em meio, suplementada com M-CSF e ativador do receptor do ligante do fator nuclear kappa-Β, RANKL, em poços de placa de vários poços revestidos com fosfato de cálcio, imitando o componente ósseo inorgânico. O M-CSF e o RANKL causam diferenciação e fusão do progenitor dos osteoclastos em osteoclastos, ativando a reabsorção.
Os osteoclastos ativados se ligam ao revestimento de fosfato de cálcio, reorganizando seu citoesqueleto para formar uma zona de vedação rica em actina e desenvolvem bordas eriçadas, que secretam prótons e hidrolases ácidas. O ambiente ácido resultante dissolve o revestimento de fosfato de cálcio, liberando íons de cálcio e fosfato e formando um poço de reabsorção.
Pós-incubação, lavar os poços, retirando os iões dissolvidos. Fixe e permeabilize os osteoclastos para posterior coloração. Manchar os filamentos de actina com um corante adequado. Contra-corar os núcleos com um corante de ligação ao DNA. Manchar o cálcio no revestimento do poço com um corante de ligação ao cálcio.
Sob um microscópio de fluorescência, os osteoclastos funcionais exibem múltiplos núcleos fluorescentes e anéis de actina, cruciais para a função de reabsorção. Os poços de reabsorção aparecem como áreas pretas no revestimento fluorescente de fosfato de cálcio sobreposto pelos anéis de actina.
Usando um software adequado, quantifique a área do poço, determinando a reabsorção osteoclástica.
Ressuspenda PBMCs em um alfa-MEM completo contendo 20 ng/mL de fator estimulador de colônias de macrófagos e semeie 2,5 x 105 células/cm2 PBMCs em um frasco. Incubar as placas revestidas de fosfato de cálcio com 50 microlitros de soro fetal bovino a 37 graus Celsius por uma hora.
Em seguida, lave o frasco duas vezes com PBS para separar os precursores de osteoclastos das células mortas ou não aderentes. Em seguida, adicione 4 mililitros de tripsina por balãode 75 cm 2. Após 30 minutos, pare a digestão adicionando 4 mililitros de alfa-MEM completo. Em seguida, retire cuidadosamente as células usando um raspador de células.
Transfira as células para um tubo de 50 mililitros e conte o número total de células usando uma câmara de contagem. Centrifugue o tubo a 350 x g por sete minutos para granular as células e ressuspenda o pellet em alfa-MEM completo contendo M-CSF e RANKL para obter 1 x 106 células / mL.
Aspirar o soro fetal bovino da placa revestida com fosfato de cálcio e pipetar 200 microlitros de suspensão celular por alvéolo. Após a incubação, lave as células duas vezes com PBS. Fixe as células com paraformaldeído a 4% por 10 minutos e lave novamente com PBS.
Para coloração, adicione tampão de permeabilização às células fixas e incube-as por cinco minutos.
Para corar os filamentos de actina, incube as células com 100 microlitros de solução de faloidina marcada com AlexaFluor 546 em PBS por 30 minutos. Em seguida, aspire a solução de coloração e core os núcleos usando 100 microlitros de Hoechst por 10 minutos.
Manchar o revestimento de fosfato de cálcio com 100 microlitros de calceína 10 micromolar em PBS por 10 minutos. Depois de lavar três vezes com PBS, capture imagens.