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Quando expostas a um alérgeno - antígeno não patogênico - as células apresentadoras de antígeno processam e apresentam o alérgeno aos linfócitos T auxiliares do tipo 2. Esses linfócitos T desencadeiam os linfócitos B para se diferenciarem em plasmócitos e produzirem anticorpos imunoglobulina E, IgE, que se ligam a receptores Fc específicos de IgE de alta afinidade na superfície dos basófilos circulantes - células secretoras contendo grânulos.
Após a exposição subsequente ao alérgeno, os complexos IgE-Fc reconhecem e se reticulam com o alérgeno, ativando basófilos para liberar grânulos que compreendem mediadores como citocinas e enzimas lisossômicas, incluindo β-hexosaminidase, evocando uma potente resposta inflamatória.
Para rastrear o potencial alérgico de um antígeno de teste in vitro, comece com uma suspensão de basófilos cancerosos de rato transduzidos expressando receptores Fc específicos de IgE humana. Trate com soro humano contendo IgE de um doador alérgico. Os anticorpos IgE se ligam e sensibilizam os receptores Fc basófilos.
Em seguida, adicione tampão e um volume adequado de antígeno de teste aos basófilos sensibilizados. O antígeno, dependendo de sua afinidade por IgE ligada aos receptores Fc, se liga aos anticorpos e inicia a degranulação basófila, liberando mediadores, incluindo β-hexosaminidase na solução.
Colete a solução em uma placa nova de vários poços contendo um substrato fluorogênico de β-hexosaminidase e incuba. β-hexosaminidase hidrolisa o substrato, gerando um produto fluorescente. Após a incubação, adicione tampão de pH alto para inibir a atividade da β-hexosaminidase e interromper a reação.
Usando um leitor de microplacas, meça a fluorescência do produto formado, indicativa da atividade liberada da β-hexosaminidase e, por sua vez, o potencial alérgico do antígeno para induzir a degranulação basófila.
Centrifugue a suspensão pré-incubada de Ag8/soro e transfira 50 microlitros da suspensão de Ag8/soro centrifugada para cada poço contendo células RBL humanizadas sem perturbar o pellet de células Ag8.
Use células sensibilizadas, não estimuladas, sem antígeno, como controle sem antígeno para indicação do platô ou fundo do sinal inferior, e não sensibilize os poços de controle de fundo e lise máxima. Cubra o prato com a tampa e incube durante a noite a 37 graus Celsius e 5% a 7% de dióxido de carbono.
Aspirar o meio celular contendo soros. Inverta e bata a placa no papel absorvente para esvaziar a placa para lavar as células RBL humanizadas. Lave as células três vezes adicionando 200 microlitros de tampão de Tyrode por poço e incube por aproximadamente 30 segundos por lavagem, nas duas primeiras lavagens. Depois de adicionar o tampão de Tyrode pela terceira vez, aspire o tampão e deixe a solução nos poços, até que esteja pronto para adicionar a diluição do antígeno.
Transfira 100 microlitros de solução de antígeno para cada poço contendo as células RBL pré-sensibilizadas e humanizadas, mas não estimule a lise máxima e as células de fundo não sensibilizadas com antígeno.
Adicione 100 microlitros de tampão de Tyrode nos poços de controle de lise máxima, poços de controle de fundo não sensibilizados e poços sensibilizados sem antígeno. Incube as células por uma hora a 37 graus Celsius e 5% a 7% de dióxido de carbono.
Trate os poços de controle de lise máxima com 10 microlitros de Triton X-100 a 10% por poço e misture adequadamente para lisar as células completamente para 100% de liberação de beta-hexosaminidase. Adicione 50 microlitros de solução de substrato em uma nova placa de 96 poços não vinculativa.
Transfira 50 microlitros de sobrenadante dos poços da placa contendo células RBL humanizadas para a nova placa contendo a solução de substrato e incube a placa por uma hora a 37 graus Celsius para permitir a conversão do substrato fluorogênico.
Adicione 100 microlitros de solução de parada por poço e meça a fluorescência conforme descrito no manuscrito do texto.