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Vírus adeno-associados recombinantes, rAAVs, vírus de DNA de fita simples geneticamente modificados, não envelopados, são portadores de genes terapêuticos promissores.
Os rAAVs se ligam aos receptores da membrana celular alvo e sofrem endocitose mediada por clatrina, facilitando a entrega nuclear do genoma do rAAV e a expressão gênica terapêutica. No entanto, anticorpos neutralizantes do sistema imunológico direcionados contra rAAVs se ligam ao epítopo específico de rAAV, interferindo na ligação à membrana celular, na entrada celular e na transferência de genes.
Para detectar anticorpos neutralizantes contra rAAVs específicos no soro de ovelhas, primeiro obtenha concentrações adequadas de soro diluído. Adicione AAVs recombinantes que expressam a fosfatase alcalina placentária humana, hPLAP, gene. Permita que anticorpos neutralizantes se liguem e neutralizem AAVs.
Transfira esta mistura para os alvéolos de uma placa de vários poços contendo cultura de células epiteliais humanas aderentes. Após a incubação, os AAVs sofrem endocitose celular. As células transduzidas expressam hPLAP ligada à membrana celular. No entanto, os AAVs neutralizados não podem entrar nas células.
Descarte o meio dos poços. Use paraformaldeído para fixar as células. Adicione tampão pré-aquecido e aqueça as células para inativar a fosfatase alcalina celular endógena; hPLAP é resistente à inativação do calor.
Adicione os substratos hPLAP - fosfato de bromocloroindolil, BCIP e nitro azul de tetrazólio, NBT. hPLAP desfosforila o BCIP, que sofre dimerização, formando um intermediário azul. Os íons de hidrogênio liberados reduzem o NBT, produzindo um precipitado roxo insolúvel. Imagem para observar depósitos roxos ao redor das células transduzidas.
Uma proporção menor de área roxa sugere um aumento da concentração de anticorpos neutralizantes de AAV.
Comece a plaquear as células HT1080 no primeiro dia, diluindo as células a uma concentração de 1 x 105 células/mL em meio DMEM completo pré-aquecido.
Em seguida, semeie 100 microlitros de células, por poço, em placas transparentes de fundo plano de 96 poços até a concentração de 1 x 104 células por poço. Incube a placa a 37 graus Celsius com 5% de dióxido de carbono durante a noite por 16 a 22 horas.
No segundo dia, gerar diluições seriadas das amostras de soro de interesse em tubos de microcentrífuga de 1,5 mililitro usando DMEM completo pré-aquecido.
A cada tubo com amostras de soro diluído, adicione 66 microlitros da solução de trabalho do genoma viral 7,5 x 106 por microlitro. Misture as diluições de vírus / soro por pipetagem e, em seguida, coloque os tubos contendo as misturas de vírus / soro em uma incubadora a 37 graus Celsius com 5% de dióxido de carbono por 30 minutos, para permitir que ocorra uma neutralização potencial.
Após 30 minutos, pipete 100 microlitros da mistura de vírus / soro para cada poço na placa de 96 poços contendo 1 x 104 células por poço e, em seguida, embrulhe a placa em uma folha para colocar em uma incubadora a 37 graus Celsius com 5% de dióxido de carbono durante a noite por 16 a 24 horas.
No terceiro dia, aspire o meio dos poços da placa de 96 poços usando um vácuo de capela sem interromper as células aderidas e adicione 50 microlitros de paraformaldeído a 4% a cada poço. Depois de embrulhar o prato em papel alumínio, deixe-o por 10 minutos em temperatura ambiente.
Posteriormente, lave e aspire as células duas vezes com 200 microlitros de PBS à temperatura ambiente. Após a segunda lavagem, pipetar 200 microlitros de PBS pré-aquecido em cada poço e embrulhar a placa em papel alumínio seguido de incubação a 65 graus Celsius por 90 minutos para desnaturar a atividade da fosfatase alcalina endógena.
Após a incubação, adicione 50 microlitros do BCIP/NBT recém-preparado e dissolvido em cada poço e incube as placas embrulhadas em temperatura ambiente por 2 a 24 horas. Mais tarde, tire fotos de cada poço usando uma lente objetiva 4x em uma câmera de microscópio de luz, garantindo o uso consistente da mesma exposição, equilíbrio de branco e configurações de luz para todos os ensaios.