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A competição intraespecífica entre duas cepas bacterianas faz com que a cepa inibidora libere moléculas efetoras tóxicas que matam a população-alvo.
Para visualizar as interações competitivas entre duas cepas bacterianas gram-negativas, comece com uma co-cultura composta por um inibidor e uma cepa-alvo em quantidades iguais.
Ambas as cepas são projetadas para expressar proteínas fluorescentes de cores diferentes para diferenciá-las visualmente durante a imagem. Concentre a cultura para maximizar o contato célula a célula entre as cepas bacterianas. Identifique a cultura mista em uma lamínula colocada no fundo de um prato.
Coloque uma almofada de agarose solidificada sobre o local, permitindo que as bactérias se imobilizem, e cubra-o com outra lamínula. Incubar para permitir o crescimento bacteriano, simulando condições de aglomeração bacteriana.
O envelope celular da cepa inibitória contém um sistema secretor especializado - o sistema de secreção tipo seis, ou T6SS. É composto por um complexo de membranas, uma placa de base e um tubo interno cercado por uma bainha contrátil.
Ao detectar o contato, a cepa inibidora ativa seu T6SS, que causa contração da bainha e expulsão do tubo, levando à perfuração da membrana celular bacteriana alvo. Isso facilita a entrega das moléculas efetoras nas bactérias-alvo, levando à sua morte.
Imagem usando um microscópio de fluorescência para identificar diferentes cepas bacterianas fluorescentes. Uma morfologia redonda da bactéria-alvo e uma redução em seu número confirmam a morte bem-sucedida pela bactéria inibidora.
Meça e registre a densidade óptica em 600 nanômetros para todas as amostras. Normalize cada amostra para uma densidade óptica de 1 diluindo a cultura com meio LBS.
Misture as duas cepas concorrentes em uma proporção igual, adicionando 30 microlitros de cada cepa normalizada a um tubo rotulado de 1,5 mililitro. Vortex a cultura de cepas mistas por 1 a 2 segundos. Misture as cepas concorrentes para cada réplica biológica e tratamento para gerar um total de 4 tubos de cepas mistas.
Concentrar três vezes cada cultura mista por centrifugação, a fim de assegurar células concorrentes suficientemente densas para serem mortas em função do contacto durante a co-incubação. Descarte o sobrenadante. Ressuspenda cada pellet e 20 microlitros de meio LBS e execute procedimentos de concentração para cada amostra.
Se estiver fazendo imagens em um microscópio invertido, comece identificando dois microlitros de uma cultura mista no fundo da lamínula # 1,5 de uma placa de Petri de 35 milímetros e coloque a almofada de agarose sobre o local de co-incubação. Coloque uma lamínula de vidro circular de 12 milímetros sobre a almofada de agarose. Repita a detecção e a colocação de lamínula para as 3 culturas mistas restantes, o que resultará em 4 pratos a serem fotografados.
Antes de prosseguir, deixe as lâminas assentarem na bancada por cerca de 5 minutos para permitir que as células se assentem na almofada de ágar, para evitar movimento durante o processo de imagem.
Comece focando nas células usando DIC para minimizar os efeitos do fotobranqueamento. Com base no tamanho médio de uma única célula bacteriana, use uma objetiva de óleo 100x. Ajuste o tempo de exposição e as configurações de aquisição para cada canal com detecção mínima de fundo. Selecione pelo menos 5 campos de visão e adquira imagens em cada canal apropriado.