Reação em cadeia da polimerase de gotículas digitais para detecção de mutação Indel em genes-alvo

0 vistas4:34 min • July 8th, 2025

A PCR digital de gotículas detecta mutações indel - inserção aleatória ou deleção de nucleotídeos no DNA. Isso é conseguido particionando a amostra em pequenas gotículas e amplificando independentemente o DNA em cada gota.

Para realizar o ddPCR, pegue uma amostra de DNA contendo variações do tipo selvagem e mutantes do gene alvo. Carregue a mistura de amostra e o óleo em compartimentos distintos da câmara do gerador de gotículas contendo o canal microfluídico.

A amostra e o óleo fluem rapidamente através dos canais estreitos, emulsionam na junção e são particionados em várias gotículas, cada uma contendo algumas moléculas de DNA.

Agora, pegue uma placa de PCR com o tampão contendo primers diretos e reversos, dNTPs, DNA polimerase termoestável e duas sondas marcadas com diferentes fluoróforos e moléculas de têmpera. Cada sonda é específica para um tipo particular de alelo - tipo selvagem ou mutante.

Transfira as gotículas para a placa de PCR. Coloque a placa em um termociclador e execute a reação. Durante a desnaturação, as fitas de DNA se separam. Na temperatura de recozimento, os primers e sondas recozeiam até o DNA molde.

A sonda com fluoróforos verdes e laranja se liga à sequência de DNA do tipo selvagem e mutante, respectivamente. Mais tarde, a DNA polimerase estende os primers, clivando as moléculas de fluoróforo e têmpera da sonda, gerando um sinal de fluorescência.

Analise o produto amplificado. As gotículas que mostram fluorescência verde contêm a sequência de DNA do tipo selvagem, enquanto a fluorescência laranja indica a mutação indel.

Para começar, prepare 25 microlitros da mistura de amostras de PCR ou ddPCR de gotículas digitais adicionando supermix ddPCR, primers diretos e reversos, sondas HEX ou FAM, DNA e água nas proporções descritas no texto. Em seguida, misture bem a reação por vórtice.

Usando uma pipeta multicanal de 50 microlitros, carregue 20 microlitros da mistura de amostra ddPCR na linha do meio do cartucho. Em seguida, use uma pipeta multicanal de 200 microlitros para carregar 70 microlitros de óleo na linha inferior sem gerar bolhas durante a pipetagem.

Coloque a gaxeta, tocando apenas nas bordas, evitando a área côncava central e, em seguida, coloque a placa com segurança no gerador de gotículas e feche a tampa para iniciar a corrida.

Para transferir a mistura de imersão da linha superior do cartucho para a placa de 96 poços, use uma pipeta multicanal e retire 40 microlitros de amostra líquida por 3 a 5 segundos em um ângulo de 30 a 45 graus. Em seguida, expulse a mistura no poço lentamente por mais de 3 segundos em um ângulo de 45 graus, permitindo que ela caia de lado e, em seguida, vá para a segunda parada da pipeta para expelir o líquido completamente. Usando selos térmicos de alumínio, sele as placas por 5 segundos a 180 graus Celsius.

Coloque a placa selada no termociclador e defina as condições de PCR para as diretrizes de entrega do NHEJ, definindo a desnaturação inicial em 95 graus Celsius por 10 minutos. Em seguida, defina 40 ciclos de 94 graus Celsius por 30 segundos para desnaturar, 55 graus Celsius por 1 minuto para recozer e 60 graus Celsius por 2 minutos para estender.

Após 40 ciclos, segure a 98 graus Celsius por 10 minutos e a retenção final a 4 graus Celsius. Use uma taxa de rampa de 2 graus Celsius por segundo para todas as etapas. A temperatura de recozimento varia de acordo com as sondas ou primer usados. Coloque a placa firmemente no leitor de gotículas com o A1 bem rotulado no canto superior esquerdo.

Abra o programa e configure a placa designando FAM como o canal de referência conhecido e HEX como o desconhecido para cada poço. Em seguida, altere o nome de cada amostra. Execute o experimento de leitura de gotículas como quantificação direta ao salvar o modelo.

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Última atualização: 29 agosto 2026