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A reação em cadeia da polimerase de fusão de alta resolução, HRM-PCR, detecta DNA de fita dupla, variações de sequência de dsDNA com alta precisão.
Comece com uma mistura principal contendo Taq polimerase inativa, trifosfatos de desoxirribonucleotídeo - dNTPs - e o corante repórter fluorescente. Adicione os primers para frente e para trás. Pipetar a mistura para os poços de uma placa de PCR.
Adicione o modelo dsDNA. Sele a placa, evitando a evaporação da mistura. Inicie o PCR.
A alta temperatura de desnaturação desnatura o dsDNA em DNA de fita simples, ssDNA, e ativa a polimerase. A reação é então resfriada até a temperatura de recozimento, facilitando a ligação direta e reversa do primer aos ssDNAs por meio do emparelhamento de bases complementares específico do local.
A polimerase ativada é recrutada, estendendo o duplex DNA-primer por adição de dNTP.
O corante repórter fluorescente - um corante específico do dsDNA presente em concentrações de saturação - intercala dentro de todo o duplex, fluorescendo intensamente. O duplex passa por vários ciclos de PCR, produzindo vários fragmentos contendo variantes.
Pós-PCR, realize a análise da curva de fusão aumentando novamente a temperatura da reação de forma constante ao longo do tempo.
Dependendo da sequência de nucleotídeos, o local contendo variantes pode desnaturar primeiro, liberando o corante. Como os locais de ligação do corante restantes estão saturados, o corante não consegue intercalar novamente, reduzindo a intensidade da fluorescência. Além disso, o dsDNA se dissocia em ssDNA após aquecimento incremental.
Identifique a temperatura de fusão, na qual metade do dsDNA se desnatura em ssDNA com uma diminuição acentuada da fluorescência. Uma mudança na curva de fusão dos fragmentos de DNA amplificados identifica as variações da sequência de nucleotídeos da amostra.
Para realizar o protocolo HRM-PCR, primeiro dilua as amostras de DNA em tubos de 1,5 mililitro com água até uma concentração de 10 nanogramas por microlitro. Em seguida, dilua as soluções de primer descongeladas em tubos de 1,5 mililitro com água até a mesma concentração de 6 micromolares. Descongele as soluções do kit HRM-PCR e misture cuidadosamente por vórtice para garantir a recuperação de todo o conteúdo.
Gire brevemente os três frascos contendo mistura enzimática com corante de ligação ao DNA, cloreto de magnésio e água em uma microcentrífuga antes de abri-los. Em um tubo de 1,5 mililitro à temperatura ambiente, use os componentes para preparar a mistura de PCR para a reação de 120 microlitros, conforme descrito no protocolo de texto. Misture cuidadosamente por vórtice.
É fundamental que você trabalhe com atenção, navegação, de acordo com as boas práticas em biologia molecular.
Pipete 19 microlitros da mistura de PCR em cada poço de uma placa branca multipoços. Adicione 1 microlitro do molde de DNA ajustado à concentração e, em seguida, sele a placa branca de vários poços com papel alumínio. Centrifugue a placa branca de poços múltiplos por 1 minuto a 1500 vezes g em uma centrífuga de balde oscilante padrão contendo um rotor para placas de vários poços com adaptadores adequados. Carregue a placa multipoços branca no instrumento HRM-PCR. Inicie o programa HRM-PCR com as condições de PCR encontradas no protocolo de texto.
Após a reação HRM-PCR, realizar a análise HRM para determinar o polimorfismo de comprimento CR1, conforme descrito no protocolo de texto.