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Para estudar as interações proteína-droga, comece com uma microbalança de quartzo-cristal, QCM, chip sensor compreendendo material cerâmico piezoelétrico revestido com uma fina camada de ouro atuando como um eletrodo.
Cubra o eletrodo com solução de medicamento de teste, formando uma camada uniforme.
Insira o chip do sensor no aparelho QCM. Mergulhe-o em uma cubeta contendo tampão. Aplique um campo elétrico, fazendo com que os cristais cerâmicos oscilem em uma frequência fixa com base na massa das moléculas do medicamento sobre o chip do sensor.
Adicione uma biblioteca de fagos T7 contendo uma mistura de fagos geneticamente modificados exibindo variantes de peptídeos fundidos com a proteína do capsídeo dos fagos. Os fagos que exibem um peptídeo específico se ligam a moléculas de drogas com alta afinidade e ficam imobilizados no chip do sensor. Essa panorâmica de fagos T7 aumenta a massa no chip do sensor, resultando em diminuição da oscilação do cristal ao longo do tempo.
Após o equilíbrio, transfira o chip sensor ligado ao fago para uma placa de Petri úmida. Cubra o chip com uma solução bacteriana e incuba. Os fagos infectam as bactérias e se replicam, produzindo fagos específicos que expressam peptídeos que são liberados na solução.
Recupere esses fagos e analise a sequência de aminoácidos dos peptídeos selecionados por afinidade de drogas. Compare a sequência de aminoácidos deste peptídeo com a proteína alvo.
A região com alta similaridade representa o potencial sítio de interação medicamentosa crucial para a interação fármaco-proteína.
Para preparar um chip sensor QCM, conecte um chip sensor cerâmico ao oscilador de um aparelho QCM de 27 megahertz e registre a frequência intrínseca na fase aérea antes da imobilização de moléculas pequenas.
Após a gravação, retire o chip e adicione cuidadosamente uma gota de 20 microlitros de uma solução derivada de molécula pequena de 1 milimolar em etanol a 70% para criar uma monocamada automontada no eletrodo de ouro do chip sensor. Coloque o chip em uma placa de Petri forrada com tecido umedecido protegido da luz por 1 hora em temperatura ambiente, antes de lavar suavemente a superfície do eletrodo com água ultrapura.
Seque o chip com uma aplicação suave de ar e carregue o chip no aparelho QCM. Após 1 hora, registre a redução na frequência na fase aérea para medir a quantidade da pequena molécula que foi imobilizada.
Para bio-panning da biblioteca de fagos T7, coloque uma cubeta com um agitador magnético dedicado no biossensor QCM ajustado para 1.000 rotações por minuto e adicione 8 mililitros de tampão de reação à cubeta.
Enquanto o buffer está sendo agitado, conecte o chip sensor QCM ao oscilador. Puxe para baixo o braço do oscilador para mergulhar o chip no buffer e comece a monitorar a frequência do QCM. Quando o sensorgrama se equilibrar em cerca de 3 Hertz por minuto por desvio de frequência, injete 8 microlitros de uma biblioteca de fagos T7 na cubeta e marque o ponto de injeção no sensor.
Monitore a redução de frequência causada pela ligação dos fagos T7 à pequena molécula imobilizada na superfície do eletrodo de ouro. Após 10 minutos, pare o monitor de frequência QCM e levante rapidamente o oscilador para remover o chip do sensor do lote. Retire o chip do sensor do oscilador e remova o buffer do chip.
Coloque o chip sensor seco em uma placa de Petri úmida e adicione uma gota de 20 microlitros de células hospedeiras de E. coli em fase logarítmica no eletrodo de ouro. Incube o prato em um misturador de microplacas de 96 poços a 37 graus Celsius e 1.000 a 1.500 rotações por minuto por 30 minutos protegido da luz para aumentar a recuperação dos fagos T7 ligados.
No final da incubação, transfira os 20 microlitros de suspensão de E. coli para 200 microlitros de meio LB. De acordo com o procedimento geral, conduza o isolamento da placa do fago no meio e o sequenciamento de DNA que codifica as sequências de peptídeos de reconhecimento de drogas exibidas em cada capsídeo do fago.