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As células somáticas adultas podem ser geneticamente reprogramadas para obter células-tronco pluripotentes induzidas, iPSCs, que exibem estados indiferenciados e proliferativos semelhantes a células-tronco.
Para diferenciar iPSCs humanas em macrófagos - glóbulos brancos que fagocitam patógenos e detritos celulares - comece com uma placa de cultura com uma superfície adesiva não celular.
Adicione meios contendo os fatores de crescimento proteína morfogenética óssea, fator de células-tronco e fator de crescimento endotelial vascular. Semeie os iPSCs e incuba.
A superfície não adesiva impede a fixação do iPSC e mantém as células em suspensão, facilitando a agregação em corpos embrióides tridimensionais, EBs. Os fatores de crescimento iniciam a diferenciação de iPSC dentro dos EBs em células de linhagem mesodérmica.
Transfira os EBs diferenciados para um tubo de centrífuga. Permita que eles se acomodem através da gravidade. Ressuspenda os EBs em meio fresco contendo interleucina-3, IL3 e fator estimulador de colônias de macrófagos, CSF1. Coloque os EBs em uma placa de cultura de células revestida de gelatina.
A gelatina - uma proteína da matriz extracelular - facilita a ligação do EB. A IL3 estimula os EBs a se diferenciarem em células-tronco progenitoras hematopoiéticas, dando origem às células mieloides. O CSF1 suporta a proliferação de células mielóides e sua diferenciação em precursores de macrófagos que são liberados e permanecem em suspensão no meio.
Recolher as células de suspensão e centrifugar. Ressuspenda as células em meio suplementado com CSF1.
Coloque as células em placas de cultura não revestidas.
O CSF1 induz a diferenciação terminal dos precursores de macrófagos em macrófagos maduros aderentes e totalmente funcionais.
Para iniciar o processo de diferenciação no dia zero, adicione 2,25 mililitros de meio de estágio 1 em dois poços de uma placa de 6 poços de fixação ultrabaixa. Em seguida, para 180% de poço confluente de iPSCs em uma placa de 6 poços, substitua o meio de manutenção por 1,5 mililitros de meio de estágio 1. Corte as colônias usando uma nova ferramenta de passagem de células. Usando uma pipeta, transfira as colônias cortadas para os dois poços da placa de 6 poços de fixação ultrabaixa.
No dia 2, ajuste as concentrações de citocinas adicionando 0,5 mililitros de meio hESC-SFM à placa de 6 poços contendo os corpos embrióides do segundo dia.
No dia 4, cubra quatro poços de uma placa de cultura de tecidos de 6 poços com gelatina a 0,1%. Depois de incubar por pelo menos 10 minutos, remova a gelatina e adicione 2,5 mililitros de meio stage 2.
Colete corpos embrióides formados dos dois poços de uma placa de 6 poços e coloque-os em um tubo de centrífuga de 50 mililitros. Deixe-os assentar no fundo do tubo por gravidade. Em seguida, aspire cuidadosamente o meio do tubo e ressuspenda os corpos embrióides em 2 mililitros de meio estágio 2.
Transfira de 10 a 15 corpos embrióides para um poço revestido de gelatina, contendo 2,5 mililitros de meio de estágio 2, e incube a 37 graus Celsius com 5% de dióxido de carbono. Por duas a três semanas, troque a mídia a cada três ou quatro dias.
O revestimento dos EBs é crucial. Ter menos de 10 ou mais de 15 EBs, ou tê-los distribuídos de forma desigual, pode levar a baixos rendimentos de macrófagos.
Após duas a três semanas, os corpos embrióides começam a liberar células hematopoiéticas não aderentes em suspensão. Usando um filtro de 40 micrômetros, colete essas células em um tubo de 50 mililitros e, em seguida, reabasteça a mídia. Centrifugar a suspensão das células hematopoiéticas a 200 x g durante três minutos.
Ressuspenda as células hematopoiéticas no meio do estágio 3. Em seguida, coloque as células em uma densidade de 0,2 x 106 por mililitro. Troque a mídia do estágio 3 a cada cinco dias.
Após nove a 11 dias, os macrófagos estarão totalmente diferenciados e totalmente funcionais.