Isolamento de linfócitos de um adesivo de Peyer de camundongo

0 vistas6:02 min • July 8th, 2025

As placas de Peyer, PPs, agregados de tecidos linfóides organizados na parede do intestino delgado, contêm células imunes, incluindo linfócitos B, linfócitos T, células dendríticas e macrófagos.

Para isolar linfócitos de PPs de camundongos, comece com um camundongo sacrificado. Incisar a parede abdominal, expondo a cavidade peritoneal. Localize o ceco. Dissecar a junção ileocecal para separar o ceco do intestino delgado.

Extirpar o mesentério e incisar o intestino delgado no duodeno para remover o intestino delgado da cavidade peritoneal. Coloque o intestino delgado em uma placa de vários poços contendo meio resfriado e enxágue para remover os detritos.

Posicione o intestino delgado com o lado mesentérico voltado para baixo e umedeça com meio para manter a hidratação do tecido. Identifique os PPs - agregados brancos multilobulados no lado antimesentérico da parede intestinal.

Extirpar cuidadosamente os PPs, excluindo o tecido intestinal circundante. Transferir para um tubo contendo meio. Incubar sob agitação constante. Esta etapa de agitação separa o muco, detritos celulares e qualquer matéria fecal dos PPs, melhorando assim a recuperação dos linfócitos PP.

Em seguida, transfira o tecido para um filtro de células com um tamanho de malha apropriado. Interrompa suavemente os PPs e libere as células. Lave com meio através do filtro para obter uma suspensão de linfócitos de célula única. Centrifugue a suspensão a uma temperatura baixa para manter a estabilidade da célula.

Ressuspenda os linfócitos em meio e use para análise posterior.

Comece colocando um camundongo em decúbito dorsal e esterilizando o abdômen com etanol a 70%. Faça uma incisão abdominal na linha média através da pele e do peritônio do púbis até a caixa torácica para abrir a cavidade peritoneal e localizar o ceco e a junção ileocecal.

Faça o corte o mais distal possível, na junção para separar o intestino delgado do ceco, e corte o mesentério com uma tesoura para remover cuidadosamente todo o intestino delgado até o esfíncter pilórico.

Corte a junção entre o piloro e o duodeno para separar completamente o intestino delgado da cavidade abdominal e coloque o intestino delgado isolado em um poço de uma placa de seis poços contendo meio RPMI frio, suplementado com 10% de soro fetal bovino ou FBS no gelo. Em seguida, agite suavemente os tecidos manualmente até que todos os segmentos estejam submersos no meio frio.

Quando todos os intestinos tiverem sido colhidos, use uma pinça para agarrar a gordura mesentérica de uma borda do intestino e coloque a amostra - lado mesentérico para baixo - em uma toalha de papel. Umedeça todo o segmento intestinal com RPMI mais 10% de FBS para evitar desidratação e viscosidade do tecido e localize as manchas de Peyer, que aparecem como agregados multilobulados brancos com formato de couve-flor no lado antimesentérico da parede intestinal.

Para colher os adesivos de Peyer, use uma tesoura cirúrgica curva com a curva voltada para cima para extirpar suavemente cada adesivo de suas bordas distal e proximal, tomando cuidado para excluir o tecido intestinal circundante, e coloque os adesivos de Peyer em poços individuais de uma placa de 12 poços contendo RPMI gelado mais 10% de FBS, no gelo, à medida que são coletados.

Quando todos os adesivos tiverem sido adquiridos, use uma tesoura para cortar a ponta de uma ponta de micropipeta de 1 mililitro para que o diâmetro seja grande o suficiente para aspirar os adesivos de Peyer individuais e transfira os adesivos de Peyer para um tubo cônico de 150 mililitros por camundongo, contendo 25 mililitros de RPMI de 37 graus Celsius mais 10% de FBS.

Em seguida, coloque os tubos em um agitador orbital a 37 graus Celsius com agitação contínua de 125 a 150 RPM por 10 minutos. No final da agitação, transfira os adesivos de Peyer para um filtro de células de 140 micrômetros por camundongo e use a extremidade de borracha do êmbolo de seringa de 110 mililitros por animal para romper suavemente os adesivos de Peyer através da malha em tubos cônicos individuais de 50 mililitros.

Enxágue os filtros com 15 a 20 mililitros de RPMI frio mais 10% de FBS e colete as células por centrifugação. Depois de descartar cuidadosamente o sobrenadante, ressuspenda novamente as células a aproximadamente 1 x 107 células por mililitro de RPMI mais 10% de concentração de FBS para contagem. Em seguida, transfira 2 para 2,5 x 106 células por 200 microlitros de meio, para cada poço de uma placa inferior redonda de 96 poços, e pelete as células por centrifugação.

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Última atualização: 29 agosto 2026