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Para gerar emigrantes tímicos derivados de iPSC, iTEs de células T imaturas em um sistema de cultura de órgãos tímicos 3D, tome desoxiguanosina, lobos tímicos fetais de camundongos tratados com dGUO em meios adequados.
O dGUO entra no ambiente tímico e destrói os linfócitos tímicos endógenos, evitando sua interferência com células T imaturas derivadas de iPSC durante a cocultura.
Faça uma incisão profunda no centro de cada lobo tímico. Transfira os lóbulos para uma placa de cultura fresca contendo meio suplementado com os fatores de crescimento fator de células-tronco, ligante FLT3 e interleucina-7.
Pipete o meio contendo lóbulo tímico nos poços de uma placa de cultura 3D. Adicione células T imaturas derivadas de iPSC. Incubar. As células T migram para os lobos tímicos através da incisão.
Dentro do ambiente tímico, os fatores de crescimento ligante FLT3 e IL-7 ligam-se aos seus respectivos receptores em células T imaturas, levando à ativação de fatores de transcrição e à expressão de genes específicos.
Consequentemente, as células T imaturas sofrem uma série de mudanças e adquirem características específicas, amadurecendo em células T CD8αβ+ que expressam moléculas CD8, receptores de células T e moléculas MHC classe I em sua superfície.
Remova as células T imaturas que não conseguiram migrar para os lobos.
Os iTEs maduros migram para fora dos lobos tímicos, que podem ser visualizados como um padrão semelhante a um halo ao redor dos lobos sob um microscópio de luz.
No dia 7 do tratamento dGOO, retire quatro novos pratos de 10 centímetros. Encha cada prato com mililitros de mídia completa. Transfira todas as membranas de nitrocelulose com lóbulos tímicos para um prato de 10 centímetros. Usando uma pinça, separe os lóbulos individuais da membrana, permitindo que sejam submersos no meio.
Incube os lóbulos por 1 hora em temperatura ambiente. Em seguida, transfira os lóbulos tímicos para um novo prato de 10 centímetros com meio completo e incube por 1 hora em temperatura ambiente. Repita esta transferência e incubação mais duas vezes.
Usando uma pinça, fixe os lobos tímicos ao prato, enquanto usa a outra mão para fazer uma incisão de 100 a 200 micrômetros de profundidade no centro e estendendo metade do diâmetro do lobo para facilitar a migração do progenitor de células T para o lobo.
Transfira os lobos tímicos para um novo prato de 10 centímetros preenchido com meios de diferenciação completos. Se estiver usando placas de cultura 3D com grades de nível inferior e superior, preencha ambas as grades com PBS estéril para evitar a evaporação e secagem das gotas penduradas.
Em seguida, transfira 30 microlitros de meio completo contendo um lobo tímico tratado com dGUO para cada poço da placa de cultura 3D. Colete as células da linhagem T não aderentes da co-cultura OP9 / DLL1 e ressuspenda as células a uma densidade de 2.000 a 5.000 células da linhagem de células T por 20 microlitros de meio. Adicione 20 microlitros da suspensão de células da linhagem T a cada lobo tímico na placa de cultura 3D. Incube durante a noite a 37 graus Celsius com 5% de dióxido de carbono.
No dia seguinte, ajuste a pipeta P200 para 30 microlitros. Pipete o meio em cada poço para cima e para baixo várias vezes, para remover todas as células ao redor dos lobos tímicos. Em seguida, aspire o meio de cada poço e substitua-o por 30 microlitros de meio completo. Repita esse processo - pipetagem, remoção e substituição do meio - 5 a 7 vezes para remover quaisquer células T imaturas extras que não migrem para os lóbulos.
Continue incubando os lóbulos, certificando-se de trocar de 25 a 30 microlitros de meio diariamente. No dia 4 ou 5, use microscopia de luz para confirmar a formação de um halo de imigrantes tímicos derivados de iPSC ao redor dos lobos. Colete os iTEs diariamente pipetando o meio sem ruptura do lóbulo. Troque a mídia todos os dias e continue a coleta por até aproximadamente 12 dias.
Os iTEs colhidos estão prontos para uso em análises moleculares ou experimentos de transplante in vivo.