Enriquecimento baseado em nanopartículas e expansão de células T CD8+ específicas para antígenos

0 vistas5:41 min • July 8th, 2025

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Macerado baço e gânglios linfáticos de camundongo em um filtro de células. Lave o filtro com um tampão adequado para coletar esplenócitos e linfócitos.

Incube as células com um coquetel de anticorpos biotinilados e microesferas magnéticas anti-biotina que se ligam às células não CD8+.

Passe a suspensão celular por uma coluna magnética. Devido à força magnética, as células não-CD8+ ligadas ao grânulo ligam-se à parede da coluna enquanto as células T CD8+ eluem para fora.

Incubar as células eluídas com células apresentadoras de antígenos artificiais, aAPCs. Estas são nanopartículas magnéticas funcionalizadas com proteína de fusão de imunoglobulina do complexo de histocompatibilidade principal carregada com antígeno, MHC-Ig e anticorpo anti-CD28.

Os MHC-Igs carregados de antígeno se ligam a receptores distintos nas células T CD8+ específicas do antígeno. Os anticorpos anti-CD28 interagem com os receptores CD28 das células T, iniciando a ativação das células T.

Coloque o tubo contendo nanopartículas magnéticas e mistura de células em um suporte magnético. As células T CD8+ ligadas a aAPC são atraídas pelo campo magnético, enquanto as células T CD8+ não específicas permanecem suspensas. Remova o sobrenadante.

Remova o tubo do suporte magnético. Ressuspenda as células ligadas a aAPC em meios contendo fator de crescimento de células T. Semeie-os em uma placa de vários poços.

Os fatores de crescimento induzem a expansão de células T CD8+ específicas do antígeno.

Para isolar células T CD8-positivas específicas do antígeno, macere os baços e linfonodos de camundongos C57Black/6j do tipo selvagem por meio de um filtro de células estéreis de 70 micrômetros com enxágues frequentes de PBS e use um kit de isolamento de células T CD8-positivas sem toque, de acordo com as instruções do fabricante, para eliminar as células T não CD8-positivas.

Após a contagem, coletar as células T CD8-positivas isoladas por centrifugação e ressuspender o pellet em 100 microlitros de PBS, suplementado com albumina sérica bovina a 0,5% e EDTA 2-milimolar.

Em seguida, incube as células com as células apresentadoras de antígenos artificiais de nanopartículas de modo que haja 1 x 1011 MHC-Ig carregado com peptídeos, por 1 x 106 células T CD8-positivas isoladas em um tubo estéril de poliestireno de 5 mililitros por 1 hora a 4 graus Celsius com mistura contínua.

Ao final da incubação, lave a suspensão de células de nanopartículas três vezes no suporte magnético conforme demonstrado, ressuspendendo as células apresentadoras de antígenos artificiais e as células T CD8-positivas enriquecidas em 500 microlitros de meio suplementado fresco com fator de crescimento de células T a 1%, após a última lavagem.

Para a máxima recuperação celular, é fundamental deixar as partículas nas células da coluna magnética por pelo menos 2 minutos e aspirar o tampão com cuidado, sem interromper as partículas e células sujeitas ao campo magnético.

Após a contagem, semeie 2,5 x 105 células T CD8-positivas enriquecidas e mistura de partículas magnéticas por 160 microlitros de meio suplementado mais 1% de TCGF em uma placa de fundo em U de 96 poços. No terceiro dia, alimente as células com 80 microlitros de meio suplementado com fator de crescimento de células T a 2% por poço e devolva a placa à incubadora de cultura de células por mais quatro dias.

No sétimo dia, colha as células estimuladas em um tubo de fundo redondo de 5 mililitros para contagem e colete as células por centrifugação. Ressuspenda o pellet em 0,5 mililitros de PBS suplementado com 0,05% de azida de sódio e 2% de soro bovino fetal para contagem e alíquota 5 x 104 a 5 x 105 células em novos tubos de fundo redondo de 5 mililitros para coloração específica do antígeno.

Rotule os tubos apropriados com MHC-Ig biotinilado e CD8a anti-camundongo por 1 hora a 4 graus Celsius, seguido de uma lavagem centrífuga em PBS fresco, para remover qualquer excesso de imunoglobulina biotinilada. Em seguida, comine as amostras com um anticorpo secundário conjugado com estreptavidina apropriado e uma coloração apropriada de células mortas vivas/mortas corrigíveis por 15 minutos a 4 graus Celsius e leia as células em um citômetro de fluxo para determinar a especificidade e o número de células T CD8-positivas específicas do antígeno, de acordo com protocolos padrão.

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Última atualização: 15 agosto 2026