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Os mastócitos - glóbulos brancos contendo grânulos citoplasmáticos cheios de mediadores inflamatórios - desempenham um papel importante nas respostas imunes inatas e adaptativas.
Para isolar mastócitos do tipo tecido conjuntivo da cavidade peritoneal - um espaço cheio de líquido que abriga órgãos abdominais - pegue um camundongo eutanasiado fixado em decúbito dorsal. Faça uma incisão longitudinal até o esterno, expondo a parede abdominal.
A cavidade peritoneal fica abaixo da parede abdominal, contendo fluido que abriga várias células imunes, incluindo macrófagos, linfócitos, leucócitos polimorfonucleares e mastócitos.
Para isolar as células por lavagem peritoneal - aspirando o conteúdo intraperitoneal - injete um meio de crescimento gelado na cavidade peritoneal sem perfurar os órgãos, evitando o vazamento de sangue. O meio frio ajuda a manter a viabilidade celular.
Agite cuidadosamente o mouse por um período adequado, misturando as células imunológicas com o meio. Insira uma seringa vazia na cavidade. Aspire lentamente o meio - recuperando a maior parte do fluido injetado para melhor rendimento celular.
Transfira a suspensão celular para um tubo coletor. Centrifugue para precipitar as células como um pellet. Descarte o sobrenadante. Ressuspenda o pellet em um meio apropriado.
Coloque as células em placas e incuba-as em condições fisiológicas, permitindo que as células adiram ao vaso de cultura. Adicione citocinas específicas que se ligam aos seus receptores nos mastócitos, induzindo a proliferação celular.
As células proliferadas estão prontas para ensaios a jusante.
Para iniciar este procedimento, borrife o camundongo eutanasiado com etanol a 70% e fixe-o em um bloco de espuma com o lado dorsal voltado para baixo usando alfinetes. Usando uma tesoura de ponta romba, remova a pele sobre o abdômen do camundongo e evite danificar a cavidade peritoneal.
Em seguida, injete 7 mililitros de meio RPMI gelado na cavidade peritoneal, inserindo uma agulha de calibre 27 cuidadosamente no peritônio. Não perfure nenhum órgão e use um ponto na região da gordura do epidídimo para reduzir o risco de perfuração de um órgão.
Após a injeção, agite o mouse por 1 minuto para separar as células peritoneais no meio RPMI. Não agite o mouse com muita força para evitar danificar os órgãos internos e contaminar a cavidade peritoneal com sangue. Em seguida, reutilize a seringa equipando-a com uma nova cânula de calibre 20
.
Desloque os órgãos internos para um lado inclinando o bloco de espuma e batendo-o suavemente no banco para facilitar a aspiração média do outro lado. Em seguida, insira uma agulha de calibre 20, chanfrada, para aspirar o fluido do abdômen suave e lentamente para evitar o entupimento pelos órgãos internos.
Colete o máximo de líquido possível. Em seguida, remova a agulha da seringa e transfira a suspensão celular coletada em um tubo de coleta no gelo. Descarte um sample tubo se houver contaminação visível do sangue.
Centrifugar o tubo com suspensão de células limpas a 300 x g durante 5 minutos. Sob um capuz estéril, aspire o sobrenadante. Ressuspenda os pellets de amostra em meio PMC frio e transfira a suspensão celular para um frasco de cultura de células de 25 centímetros quadrados.
Em seguida, adicionar os factores de crescimento IL3 e SCF às concentrações finais de 10 nanogramas por mililitro e 30 nanogramas por mililitro, respectivamente. Incubar as células por aproximadamente 48 horas a 37 graus Celsius, até o próximo procedimento.