Indução e visualização de armadilhas extracelulares de neutrófilos em neutrófilos pré-marcados

0 vistas4:32 min • July 8th, 2025

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Comece com uma placa de vários poços contendo neutrófilos marcados com fluorescência e trate-os com soro do paciente contendo anticorpos anticitoplasma de neutrófilos.

Esses anticorpos interagem com os receptores Fc do neutrófilo, ativando uma via de sinalização, produzindo espécies reativas de oxigênio ou ROS e ativando a peptidil arginina deiminase.

As ERO causam degranulação dos neutrófilos, liberando enzimas - elastase e mieloperoxidase no citoplasma. Essas enzimas e peptidil arginina desiminases ativadas se translocam para o núcleo.

A elastase cliva a histona-H1 e a mieloperoxidase modifica as histonas, iniciando a descondensação da cromatina. A peptidil arginina deiminase ativada induz a citrulinação de histonas, convertendo resíduos de arginina em citrulina e contribuindo para uma maior descondensação.

A cromatina descondensada se mistura com proteínas intracelulares, incluindo proteínas antimicrobianas e citoplasmáticas. Posteriormente, a membrana do neutrófilo se desintegra, liberando cromatina descondensada misturada com proteínas citoplasmáticas no espaço extracelular, formando uma armadilha extracelular de neutrófilos, NET.

Adicione um corante de DNA impermeável a células, ligando-se exclusivamente ao DNA extracelular em TNEs. Sob um microscópio de fluorescência, os neutrófilos aparecem vermelhos com estruturas verdes extracelulares semelhantes a teias, confirmando a formação de NET.

Faça uma suspensão celular com uma densidade de 420.000 células por mililitro em meio RPMI-1640 sem vermelho de fenol contendo 2% de FCS. Adicione 37.500 neutrófilos em 90 microlitros a cada poço de uma placa preta de fundo plano de 96 poços.

Em seguida, adicione 10 microlitros do estímulo escolhido, em triplicata, para atingir uma concentração de 10% em cada poço. Inclua sempre um controlo negativo em triplicado. Incube no escuro a 37 graus Celsius pelo tempo desejado, variando de 30 minutos a 2, 4 ou 6 horas. Em seguida, prepare o volume de corante de DNA impermeável necessário para adicionar 25 microlitros de corante de DNA impermeável de 5 micromolares para atingir uma concentração final de 1 micromolar em cada poço.

15 minutos antes do final do tempo de incubação, adicione 25 microlitros de corante de DNA impermeável de 5 micromolares a cada poço. Continue a incubação pelos últimos 15 minutos a 37 graus Celsius no escuro. Depois disso, remova o sobrenadante com muito cuidado e armazene se necessário. Adicione 100 microlitros de paraformaldeído a 4%. Mantenha o prato no escuro e prossiga imediatamente para a próxima seção.

Depois de definir as configurações, selecione Série Z. Selecione 10 como o número de etapas. Selecione 3 micrômetros como o tamanho do passo. Carregue a placa no microscópio confocal de imunofluorescência.

Clique na guia Executar. Preencha o nome e a descrição da placa e escolha o local de armazenamento. Selecione os poços que precisam ser adquiridos. Escolha o Tempo de Exposição para Texas Red e FitC, clique em Adquirir Placa e inicie a aquisição, que levará aproximadamente 1 hora por placa.

Depois disso, selecione Macro de análise. Em seguida, selecione W1 e escolha o valor limite. Em seguida, selecione o valor de pixel desejado e, finalmente, em uma segunda janela do ImageJ, selecione W2 e escolha o valor limite com o valor de pixel desejado. Selecione um destino para o arquivo de planilha. Execute a análise e salve o arquivo de log posteriormente.

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Última atualização: 1 agosto 2026