Análise de sinapses imunes entre células T humanas e células Raji carregadas com SEB usando citometria de fluxo de imagem

0 vistas4:28 min • July 8th, 2025

Pegue tubos de citometria de fluxo contendo células Raji descarregadas e Staphylococcus aureus enterotoxina B ou células Raji carregadas com SEB.

Essas células Raji carregadas de SEB funcionam como células B apresentadoras de antígenos substitutos contendo o superantígeno SEB complexado a moléculas de MHC de classe II.

Incubar com pan-leucócitos.

Os receptores de células T, TCRs nas células T, ligam-se aos SEBs nas células Raji, que, juntamente com os sinais co-estimulatórios, estabelecem uma junção célula-célula estável, uma sinapse imune, levando à ativação das células T.

Isso desencadeia vias de sinalização intracelular, causando o rearranjo do citoesqueleto de actina, com o agrupamento de moléculas de sinalização e receptores de superfície dentro da sinapse.

Após a incubação, fixe as células para preservar suas estruturas celulares. Permeabilize as células para acessar alvos intracelulares.

Adicione anticorpos anti-CD3 marcados com fluoróforo, faloidina e DAPI, que se ligam ao CD3 no complexo TCR, filamentos de actina e DNA, respectivamente.

Usando um citômetro de fluxo de imagem, visualize sinais fluorescentes de CD3 e actina para determinar seu enriquecimento na sinapse na presença de SEB.

Comece misturando um mililitro de sangue periférico humano recém-coletado com 30 mililitros de tampão de lise ACK em um tubo cônico de 50 mililitros. Após oito minutos em temperatura ambiente, encha o tubo com PBS para uma lavagem de centrifugação e ressuspenda o pellet em dois mililitros de meio de cultura para uma incubação de 60 minutos a 37 graus Celsius.

No final da incubação, adicione 5 x 105 Staphylococcus aureus enterotoxina B ou células Raji carregadas ou descarregadas de SEB em 500 microlitros de meio de cultura em tubos FACS individuais, seguidos por 650 microlitros de pan-leucócitos. Gire as co-culturas e ressuspenda os pellets em 150 microlitros de meio de cultura fresco para uma incubação de 45 minutos a 37 graus Celsius.

Em seguida, subtraia suavemente as células por 10 segundos a 100 RPM enquanto adiciona 1,5 mililitros de paraformaldeído a 1,5%. Após 10 minutos à temperatura ambiente, pare a fixação com um mililitro de PBS suplementado com 1% de BSA e colete as células por centrifugação. Ressuspenda os pellets em 100 microlitros de PBS mais BSA e 0,1% de saponina e adicione as amostras de células a dois poços individuais de uma placa de fundo em U de 96 poços.

Após 15 minutos à temperatura ambiente, centrifugue a placa e ressuspenda os pellets em 50 microlitros de PBS mais BSA e saponina, contendo os anticorpos conjugados com fluoróforo ou compostos de interesse para uma incubação de 30 minutos no escuro à temperatura ambiente. No final da incubação, lave as células três vezes em 150 microlitros de PBS mais BSA e saponina, e ressuspenda os pellets em 60 microlitros de PBS.

Para obter imagens das células por citometria de fluxo, abra o software de análise, verifique o nível do líquido e clique em Iniciar no menu do instrumento. Em seguida, clique em Carregar e carregue as amostras na porta quando solicitado.

Na guia Iluminação, altere a potência do laser de excitação para os comprimentos nanométricos apropriados. Em seguida, ajuste as portas para os canais 4 e 11 e ajuste a área para o canal 1.

Para avaliar os ajustes de gating e potência do laser, alterne o menu View para o respectivo portão e ajuste os portões e as potências do laser até que as células e os pares de células estejam visíveis. Em seguida, na guia Aquisição de arquivo, defina o nome da amostra, o número de imagens a serem adquiridas e a porta apropriada para a coloração de CD3 e clique em Adquirir para iniciar a aquisição.

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Última atualização: 29 agosto 2026