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Comece com uma cultura descongelada de Mycobacterium bovis BCG lux, uma cepa bioluminescente geneticamente modificada de Mycobacterium bovis atenuado que expressa a enzima repórter luciferase.
Inocular a suspensão num balão de cultura contendo o meio de crescimento suplementado com antibiótico higromicina. Incubar. O BCG lux abriga o gene resistente à higromicina, facilitando sua sobrevivência e crescimento.
Pós-incubação, preparar diluições de cultura adequadas utilizando um tampão em tubos de luminómetro. Transfira para o luminômetro, carregado com uma solução de substrato de aldeído alifático de cadeia longa. Durante a corrida, o aldeído é injetado na suspensão micobacteriana que entra nas células.
A luciferase bacteriana catalisa a oxidação do mononucleotídeo de flavina reduzida endógena e do aldeído, resultando na emissão de luz azul-esverdeada. A intensidade de bioluminescência medida indica a atividade metabólica do BCG lux e se correlaciona com a medida de bactérias viáveis ou unidades formadoras de colônias, UFC.
Em seguida, centrifugue a cultura micobacteriana restante. Ressuspenda o pellet micobacteriano em um tampão contendo um surfactante não iônico para evitar a aglomeração de micobactérias.
Usando as medições de bioluminescência, dilua a suspensão para obter a densidade celular desejada. Prepare diluições seriadas de micobactérias e coloque-as em placas de ágar nutriente suplementadas com higromicina. Incubar, permitindo que o BCG lux forme colônias.
Calcule a UFC para confirmar a correlação com a intensidade da bioluminescência. O inóculo BCG lux preparado pode ser usado para estudos de infecção.
Para começar, descongele um estoque congelado de glicerol de 1,2 mililitro de Mycobacterium bovis BCG lux. A cepa da vacina Montreal se transformou com o plasmídeo PSMT-1 carregando os genes luxAB. Em um frasco Erlenmeyer rotulado de 250 mililitros, inocule 15 mililitros de caldo Middlebrook 7H9 com a alíquota descongelada de 1,2 mililitro de BCG lux.
Colocar o balão num recipiente de biossegurança selado e incubar a 37 graus Celsius numa incubadora de agitador orbital a 220 RPM durante 72 horas. Após a incubação, preparar uma a 10 diluições da cultura em solução salina tamponada com fosfato em tubos luminómetros. Vórtice e carregue os tubos do luminômetro no luminômetro.
Carregue o substrato 1% de n-decil aldeído em etanol absoluto na plataforma injetora e meça a bioluminescência. Converta a bioluminescência em unidades formadoras de colônias para verificar o crescimento da cultura de BCG lux.
Transferir a cultura para um tubo de centrifugação e centrifugar a 2.175 vezes g durante 10 minutos à temperatura ambiente para peletar as células. Descarte o sobrenadante em um desinfetante apropriado com atividade micobactericida conhecida. Lave o pellet celular duas vezes em 50 mililitros de PBS-T centrifugando a 2.175 vezes g por 10 minutos para evitar a aglomeração bacteriana.
Após a lavagem final, decantar o sobrenadante residual e ressuspender o pellet de células micobacterianas no volume necessário de PBS-T para diluir a suspensão micobacteriana até à densidade celular desejada. Em seguida, prepare diluições seriadas de 10 vezes do inóculo em placas de 24 poços usando PBS-T.
Retire 10 microlitros de cada diluição em placas de ágar Middlebrook 7H11 em duplicata para enumerar as contagens de UFC de inóculo.