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Durante a infecção, os macrófagos alveolares liberam armadilhas extracelulares de macrófagos ou METs para eliminar patógenos.
Os METs consistem em fibras de cromatina complexadas com peptidil arginina deiminases, PADs, metaloproteinases de matriz e histonas citrulinadas.
Para visualizar METs em macrófagos do fluido de lavagem broncoalveolar, primeiro centrifugue o fluido.
Coloque as células ressuspensas em lamínulas dentro de poços de placas de vários poços.
Os macrófagos se ligam às lamínulas, enquanto outras células permanecem suspensas e são descartadas.
Fixe os macrófagos, preservando a estrutura celular. Permeabilize-os para acessar os alvos celulares.
Adicione proteínas bloqueadoras, impedindo a ligação de anticorpos não específicos.
Suplemento com um coquetel de anticorpos primários que se liga a histonas citrulinadas, PADs e metaloproteinases da matriz, respectivamente.
Adicione diferentes anticorpos secundários marcados com fluoróforo que se ligam aos anticorpos primários ligados à proteína MET alvo.
Monte as células com meio de montagem contendo DAPI. DAPI, um corante fluorescente, mancha as fibras da cromatina.
Usando um microscópio confocal, visualize os METs caracterizados por fibras de cromatina extracelular fluorescentes com histonas citrulinadas, PADs e metaloproteinases.
Após a obtenção de macrófagos pulmonares de humanos e camundongos por lavagem broncoalveolar, ou LBA, de acordo com o protocolo de texto, use azul de tripano e um hemocitômetro para realizar uma contagem de células viáveis na solução de LBA. Pipetar 1 a 4 x 105 macrófagos em 500 microlitros de meio de cultura em lamínulas nos poços de placas de 24 poços. Em seguida, incube as células a 37 graus Celsius durante a noite para que as células adiram.
Remova o meio de cultura e use PBS para lavar as células uma vez. Em seguida, adicione 2% de paraformaldeído/periodato/lisina ou fixador PLP e incube as amostras por 10 minutos. Depois de usar PBS para lavar brevemente as células, adicione 0,2% de Tween-20 em PBS e incube as células por 20 minutos.
Em seguida, para bloquear as células, adicione 10% de soro de frango em 5% de BSA diluído em PBS e incube as amostras em temperatura ambiente por 30 minutos. Em seguida, substitua a solução em bloco por uma concentração de 1 a 100 de anticorpos primários e de controle de isótopos e incube as células em temperatura ambiente por uma hora. Após a incubação, use PBS para lavar as células antes de adicionar os anticorpos secundários correspondentes. Em seguida, incube as amostras por 40 minutos em temperatura ambiente.
Depois de lavar as células em PBS, monte as amostras com meio de montagem à base de DAPI. Em seguida, visualize as amostras usando um microscópio confocal.