Coloração por citometria de fluxo de subpopulações de macrófagos infectados por Mycobacterium tuberculosis

0 vistas3:18 min • July 8th, 2025

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Comece com subpopulações de macrófagos M1 e M2 aderentes, distinguidas por seus marcadores de superfície específicos. Essas células estão infectadas com Mycobacterium tuberculosis marcado com fluorescência.

Adicione o buffer FACS aos poços de cultura.

O EDTA no tampão permite o desprendimento celular dos poços de cultura.

Transfira a suspensão celular para tubos de microcentrífuga.

Centrifugue os tubos. Descarte o sobrenadante. Ressuspenda as células em um coquetel de anticorpos antimacrófagos conjugado com fluorocromo e corante de viabilidade, Zombie-UV.

O corante de fluorescência Zombie-UV entra nas células mortas através de membranas danificadas e se liga a proteínas citoplasmáticas, permitindo uma diferenciação clara de células viáveis não coradas.

Além disso, os anticorpos antimacrófagos conjugados com fluorescência se ligam a antígenos-alvo nos macrófagos, permitindo a detecção diferencial de subpopulações.

Lave as células para remover anticorpos não ligados. Centrifuga. Remova o sobrenadante.

Ressuspenda as células em um tampão fixador para reticular proteínas, preservando a morfologia celular e inativando micobactérias para manuseio seguro durante a análise.

Finalmente, centrifugue e processe as amostras para citometria de fluxo.

Use uma estratégia de gating apropriada para determinar a porcentagem de subpopulações infectadas por Mycobacterium.

Para corar as células para citometria de fluxo, incube as células infectadas com 1 mililitro de tampão FACS suplementado com EDTA 0,5 milimolar por poço por pelo menos 30 minutos. No final da incubação, colete as células destacadas com pipetagem suave e transfira as células para tubos de microcentrífuga individuais com tampa de rosca para centrifugação.

Ressuspenda as células em aproximadamente 50 microlitros de coquetel de anticorpos anti-humanos conjugados com fluorocromo e corante de viabilidade de interesse e incube as células por 30 minutos a 4 graus Celsius protegidas da luz.

Após a lavagem, fixe as células com 200 microlitros de tampão de fixação recém-preparado por 30 minutos em temperatura ambiente protegida da luz. Após a fixação e lavagem, ressuspenda as células em 400 microlitros de tampão FACS e transfira as células para tubos de microcentrífuga de 1 mililitro.

Para analisar as células, use contas de compensação para compensar o sinal fluorescente para cada anticorpo conjugado com fluorocromo no coquetel e use células não coradas para definir a porta para a população de células negativas. Em seguida, adquira um mínimo de 50.000 células por amostra.

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Última atualização: 1 agosto 2026