Rastreamento de leucócitos baseado em fotoconversão em peixe-zebra transgênico infectado por bactérias

0 vistas4:02 min • July 8th, 2025

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Comece com um prato contendo larvas de peixe-zebra transgênicas, anestesiadas e embebidas em agarose, expressando a proteína fluorescente fotoconversível em seus leucócitos - células imunes fagocíticas.

A vesícula ótica esquerda, pré-injetada com bactérias marcadas com corante fluorescente vermelho, é posicionada contra o fundo do prato.

Dentro da vesícula ótica, as bactérias pré-injetadas causam uma infecção local, desencadeando a migração de células imunes e a liberação de quimiocinas, causando infiltração de leucócitos na vesícula ótica.

Sob um microscópio de fluorescência, observe o recrutamento inicial de leucócitos verdes e a fagocitose de bactérias vermelhas pelos leucócitos no local da infecção.

Ilumine a vesícula ótica com um comprimento de onda de 405 nanômetros, transformando irreversivelmente a proteína fluorescente fotoconversível de verde para vermelho e transmitindo fluorescência vermelha aos leucócitos - permitindo sua visualização distinta e rastreamento preciso.

Agora, examine as larvas em dois comprimentos de onda diferentes em várias profundidades, permitindo a visualização de leucócitos de fluorescência vermelhos fotoconvertidos e verdes restantes.

Os

leucócitos vermelhos fotoconvertidos se dispersam das vesículas óticas e se espalham por todo o corpo, facilitando o rastreamento de leucócitos baseado em fotoconversão.

Depois de preparar agarose com tricaína de acordo com o protocolo de texto no estágio do estereomicroscópio, use uma pipeta de transferência para colocar quatro a cinco larvas anestesiadas em um prato com fundo de vidro. Remova a solução de tricaína e agarose do banho-maria a 55 graus Celsius e deixe esfriar em temperatura ambiente por 1 a 2 minutos.

Enquanto isso, remova o máximo possível de líquido das larvas anestesiadas. Em seguida, despeje a agarose resfriada no prato até que cerca de metade da superfície esteja coberta. Em seguida, gire o prato para espalhar a agarose. Pegue as larvas que flutuaram para os lados do prato e pipete-as de volta para o centro. Em seguida, sob o estereomicroscópio, use uma ponta de pipeta longa para posicionar suavemente as larvas conforme desejado.

Para obter imagens da vesícula ótica, posicione as larvas de forma que a vesícula ótica direita fique voltada para cima e a vesícula ótica esquerda fique plana contra o fundo do prato. Deixe a agarose esfriar por cerca de 10 minutos antes de mover o prato. Em seguida, pipete suavemente um pouco de tricaína e solução de E3 em cima da camada de agarose para mantê-la úmida.

Para visualizar as amostras, use uma varredura z-stack com lasers de 488 nanômetros e 543 nanômetros. Use a varredura de linha contínua para ajustar a potência do laser e o ganho do detector. Verifique se não há fluorescência vermelha fotoconvertida acidentalmente. Na janela "Controle de aquisição de imagem", em "Configuração de estímulo", selecione a ferramenta "Usar scanner" e escolha "Principal". Selecione o laser de 405 nanômetros e defina-o para 70% da potência. Em seguida, usando a opção círculo, defina a região de interesse na vesícula ótica.

Na "Configuração de início do estímulo", selecione "Ativação em série" com uma pré-ativação de 1 quadro e um tempo de ativação de 60.000 milissegundos. Na janela "Configuração de aquisição", sob o título "Varredura de tempo", escolha dois intervalos de minuto, cada um para pré e outro para pós-conversão de foto. Inicie a série de lapso de tempo para iniciar a fotoconversão da região de interesse definida. Finalmente, escaneie a amostra usando uma pilha z e os lasers de 488 e 543 nanômetros para visualizar a fluorescência vermelha fotoconvertida, bem como qualquer fluorescência verde restante.

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Última atualização: 1 agosto 2026