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Pegue esplenócitos depletados de glóbulos vermelhos em um tampão contendo um corante fluorescente sensível ao cálcio permeável por células, Indo-1 AM.
As esterases intracelulares clivam o Indo-1 AM em Indo-1 impermeável à membrana, que se liga aos íons de cálcio, alterando o sinal de fluorescência do Indo-1 de azul para violeta.
Introduzir anticorpos específicos do antígeno conjugado com fluoróforo que se ligam especificamente aos respectivos antígenos nas células.
Usando citometria de fluxo, identifique células B marcadas com fluoróforo e meça sua taxa de fluorescência violeta para azul Indo-1.
Agora, trate as células com lipossomas antigênicos compreendendo fragmentos IgM Fab conjugados a bicamadas de lipossomas.
Os receptores de células B se ligam aos antígenos acoplados a lipossomas, ativando as tirosina quinases citoplasmáticas associadas e desencadeando a ativação da fosfolipase-C gama-2.
A fosfolipase-C ativada cliva o fosfolipídio da membrana, fosfatidilinositol 4,5-bifosfato, gerando segundos mensageiros, incluindo inositol 1,4,5-trifosfato, ou IP3.
O IP3 se liga aos canais de cálcio dependentes de IP3 no retículo endoplasmático, liberando íons de cálcio no citoplasma.
Esses íons de cálcio se ligam às moléculas de Indo-1 não ligadas, aumentando a fluorescência violeta.
Uma maior relação de fluorescência violeta-azul Indo-1 em células B marcadas confirma sua ativação bem-sucedida por lipossomas antigênicos.
Para monitorar a resposta das células B à ativação de lipossomas antigênicos, ressuspenda 1,5 x 107 esplenócitos no tampão de carga de fluxo de cálcio e adicione 1,5 Indo-1 micromolar às células, invertendo a solução no tubo várias vezes para misturar. Após uma incubação em banho-maria de 30 minutos a 37 graus Celsius protegida da luz, adicione 5 vezes o volume do tampão de carga de fluxo de cálcio e centrifugue as células marcadas com Indo-1.
Para gating de células B, core as células com anticorpos anti-CD5 e anti-B220 em 0,5 mililitros de tampão de carga a 4 graus Celsius por 20 minutos protegidos da luz. No final da incubação, lavar as células em tampão de carga de fluxo de cálcio fresco e ressuspender o pellet a 1 a 2 x 107 células por mililitro de tampão de fluxo de cálcio fresco para armazenamento em gelo protegido da luz, até à análise.
Em seguida, adicione 0,5 mililitros de células a um tubo de poliestireno de fundo redondo de 5 mililitros com tampa e aqueça as células a 37 graus Celsius em banho-maria. Após 3 a 5 minutos, transfira o tubo para uma câmara com camisa de água a 37 graus Celsius conectada a um banho-maria de recirculação e passe o tubo na camisa de água no citômetro de fluxo.
Depois de coletar de 5.000 a 10.000 eventos por segundo, permita que as células se estabilizem por 15 a 30 segundos e reinicie a aquisição de dados, coletando os dados por pelo menos 10 segundos para estabelecer uma leitura em segundo plano. Na marca de 10 segundos, remova rapidamente o tubo do citômetro de fluxo e adicione a concentração experimental apropriada de lipossomas antigênicos. Em seguida, pulse o vórtice das células e leia o tubo no citômetro por mais 3 a 5 minutos.