Avaliação da topologia imunológica de sinapses por meio de imagens de células vivas

0 vistas5:03 min • July 8th, 2025

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Pegue uma placa de microscópio com tampão contendo células endoteliais humanas transfectadas e tratadas com superantígeno, com os superantígenos complexados com moléculas de MHC de classe II.

Essas células apresentadoras de antígenos artificiais co-expressam diferentes proteínas fluorescentes em suas membranas e citoplasma.

Em seguida, introduza linfócitos T, que interagem com os superantígenos nas células endoteliais por meio de receptores de células T, formando uma junção célula-célula estável, uma sinapse imunológica.

Isso desencadeia o rearranjo do citoesqueleto de linfócitos T, iniciando a disseminação celular e a extensão da actina, resultando na formação de saliências semelhantes a invadossoma, ou ILPs, enriquecidas com actina, adesão e moléculas de sinalização.

As moléculas de adesão se ligam a receptores específicos nas células endoteliais, fortalecendo a interação.

A formação de sinapses ativa as vias de sinalização dos linfócitos T, elevando os níveis de cálcio intracelular e estabilizando as ILPs.

As ILPs induzem a flexão localizada da membrana nas células endoteliais, formando anéis superficiais transitórios.

Sob um microscópio de fluorescência, analise a topologia da sinapse compreendendo zonas circulares escuras de deslocamento do citoplasma fluorescente na célula endotelial, co-localizadas com diferentes anéis de membrana fluorescente ao redor das ILPs, confirmando a formação de sinapses imunológicas.

Para obter imagens ao vivo das células, ligue o sistema de microscópio e abra o software de captura de imagem apropriado. Defina os parâmetros apropriados para imagens automatizadas de lapso de tempo multicanal, bem como o intervalo de aquisição de 10 a 30 segundos e uma duração total de aproximadamente 20 a 60 minutos.

Em seguida, adicione óleo fresco à objetiva. Monte uma placa de microscópio contendo 0.5 mililitros de tampão A no adaptador de estágio de aquecimento e ligue imediatamente o adaptador, previamente ajustado para 37 graus Celsius. Após dois a três minutos de equilíbrio, use uma pipeta de 20 microlitros para adicionar os linfócitos carregados com Fura-2 em repouso na câmara do microscópio montada e ligue a imagem de campo claro.

Selecione o caminho da luz para as oculares e use o botão de foco grosso para colocar a objetiva em contato com a parte inferior da antena do microscópio. Em seguida, use a ocular e o botão de foco fino para localizar as células T instaladas na parte inferior do prato e use os controles de estágio XY para selecionar um campo contendo pelo menos 10 células.

Quando as células apropriadas forem localizadas, mude do campo claro para a fonte de luz fluorescente e da imagem ocular para a câmera CCD. Otimize os parâmetros de aquisição e, em seguida, adquira as imagens Fura2-340 e Fura2-380 em repouso.

Uma das principais etapas para gerar resultados bem-sucedidos é a otimização cuidadosa dos parâmetros de aquisição de fluorescência, garantindo que sinal suficiente seja coletado e, no caso do Fura-2, que a proporção de 340/380 da linha de base esteja próxima de 1.

Quando os tempos de exposição do Fura-2 tiverem sido definidos, substitua a placa de células T pela placa de microscópio de células endoteliais. Usando uma pipeta de transferência descartável, remova rapidamente o meio e enxágue as células uma vez com 1 mililitro de tampão A pré-aquecido e, em seguida, substitua a lavagem por 0,5 mililitros de tampão A fresco.

Usando o objetivo, identifique os campos nos quais as células endoteliais brilhantemente fluorescentes parecem saudáveis e, em seguida, ajuste os parâmetros de aquisição para membrana-YFP e DsRed como acabamos de demonstrar para Fura-2, cuidando para que a intensidade média do sinal fluorescente em cada canal fique entre 25% e 75% da faixa dinâmica do detector.

Antes de realizar o experimento de imagem de células vivas, capture vários intervalos de imagens das células endoteliais sozinhas para estabelecer uma linha de base com o software automatizado. Em seguida, inserindo a ponta de uma pipeta de pequeno volume no meio próximo ao centro da objetiva, dispense lentamente 5 microlitros de linfócitos concentrados carregados com Fura-2 no centro do campo de imagem da placa microscópica.

À medida que os linfócitos se acomodam, faça ajustes finos no foco para garantir que as interfaces células T/células endoteliais sejam mantidas no plano focal. Com as objetivas de 40x e 63x, 10 a 20 células por campo é o ideal.

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Última atualização: 15 agosto 2026