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Comece colocando uma lâmina de vidro com uma monocamada endotelial estimulada por citocina aderente em uma câmara de fluxo.
Essas células endoteliais expressam moléculas de adesão de superfície, como selectinas, e sinais migratórios ligados ao endotélio, como quimiocinas.
Introduza leucócitos marcados com fluorescência na câmara de fluxo.
À medida que os leucócitos fluem sobre a monocamada endotelial, eles se envolvem com as células endoteliais ativadas.
As selectinas nas células endoteliais ligam-se aos seus ligantes correspondentes nos leucócitos.
As interações selectina-ligante são fracas e transitórias, permitindo que os leucócitos rolem ao longo da monocamada endotelial sob a força de um meio fluido.
O rolamento permite que os leucócitos interajam com as quimiocinas, ativando as integrinas e promovendo a parada firme dos leucócitos.
Posteriormente, os leucócitos se espalharam pela monocamada endotelial, significando seu potencial de transmigração, uma etapa crucial na resposta imune.
Este ensaio ajuda a estudar o mecanismo de adesão, desadesão e transmigração de leucócitos enquanto os perfunde sobre as células endoteliais.
Use um micromolar de coloração de ácido nucleico fluorescente verde permeável para marcar fluorescentemente os leucócitos. Após a rotulagem, incube os leucócitos por 30 minutos a 37 graus Celsius. Em seguida, centrifugue as células a 300 vezes g por 5 minutos para pellet as células.
Ressuspenda em solução salina tamponada com fosfato para lavar as células. Em seguida, centrifugue as células a 300 vezes g por 5 minutos. Com base na taxa de fluxo, suspenda 5 mililitros das células no tampão de ensaio. Em seguida, aqueça um banho-maria para manter 37 graus Celsius.
Em seguida, reserve uma seringa de perfusão de 50 mililitros e instale-a no suporte da seringa. Em seguida, coloque a bomba no modo de retirada, com o volume da bomba em 0 mililitro e diâmetro em 26.70 milímetros. Em seguida, conecte um acoplador Luer-lock à seringa e conecte a tubulação com o conector luer de cotovelo ao acoplador Luer-lock. Em seguida, conecte a extremidade livre da tubulação à câmara de fluxo. Para aderir os leucócitos às plaquetas imobilizadas, conecte a lâmina com a seringa.
Para perfundir os leucócitos e, em seguida, aderir a um leito de monocamada vascular ou plaquetária, conecte um segundo tubo a um tubo cônico de 50 mililitros contendo o tampão de ensaio e, em seguida, encha o tubo usando uma pipeta de 1 mililitro. Assim que a tubulação estiver cheia, aperte-a e conecte-a à câmara de fluxo. Antes de perfundir os leucócitos, adicione 3 milimolares de cloreto de cálcio e 2 milimolares de cloreto de magnésio à suspensão celular. Em seguida, incube as células a 37 graus Celsius por 5 minutos.
Para remover o possível ar preso na câmara e na tubulação, perfunda com tampão de ensaio antes de perfundir as células. Em seguida, aperte os tubos para fechar a extremidade e troque a tubulação do tampão de ensaio para a suspensão da célula, evitando assim bolhas de ar presas no interior.
Para que as primeiras células cheguem, perfunda as células na taxa de fluxo e tensão de cisalhamento apropriadas. Continue perfundindo as células, mantendo a taxa de fluxo e a tensão de cisalhamento por dois minutos. Em seguida, capture seis imagens das células rolantes e dissuasivas entre 2 a 6 minutos usando um microscópio de fluorescência com ampliação de 10 vezes conectado a uma câmera digital.