Um ensaio baseado em fluxo laminar para estudar as interações entre leucócitos e células endoteliais

0 vistas3:54 min • July 8th, 2025

Comece colocando uma lâmina de vidro com uma monocamada endotelial estimulada por citocina aderente em uma câmara de fluxo.

Essas células endoteliais expressam moléculas de adesão de superfície, como selectinas, e sinais migratórios ligados ao endotélio, como quimiocinas.

Introduza leucócitos marcados com fluorescência na câmara de fluxo.

À medida que os leucócitos fluem sobre a monocamada endotelial, eles se envolvem com as células endoteliais ativadas.

As selectinas nas células endoteliais ligam-se aos seus ligantes correspondentes nos leucócitos.

As interações selectina-ligante são fracas e transitórias, permitindo que os leucócitos rolem ao longo da monocamada endotelial sob a força de um meio fluido.

O rolamento permite que os leucócitos interajam com as quimiocinas, ativando as integrinas e promovendo a parada firme dos leucócitos.

Posteriormente, os leucócitos se espalharam pela monocamada endotelial, significando seu potencial de transmigração, uma etapa crucial na resposta imune.

Este ensaio ajuda a estudar o mecanismo de adesão, desadesão e transmigração de leucócitos enquanto os perfunde sobre as células endoteliais.

Use um micromolar de coloração de ácido nucleico fluorescente verde permeável para marcar fluorescentemente os leucócitos. Após a rotulagem, incube os leucócitos por 30 minutos a 37 graus Celsius. Em seguida, centrifugue as células a 300 vezes g por 5 minutos para pellet as células.

Ressuspenda em solução salina tamponada com fosfato para lavar as células. Em seguida, centrifugue as células a 300 vezes g por 5 minutos. Com base na taxa de fluxo, suspenda 5 mililitros das células no tampão de ensaio. Em seguida, aqueça um banho-maria para manter 37 graus Celsius.

Em seguida, reserve uma seringa de perfusão de 50 mililitros e instale-a no suporte da seringa. Em seguida, coloque a bomba no modo de retirada, com o volume da bomba em 0 mililitro e diâmetro em 26.70 milímetros. Em seguida, conecte um acoplador Luer-lock à seringa e conecte a tubulação com o conector luer de cotovelo ao acoplador Luer-lock. Em seguida, conecte a extremidade livre da tubulação à câmara de fluxo. Para aderir os leucócitos às plaquetas imobilizadas, conecte a lâmina com a seringa.

Para perfundir os leucócitos e, em seguida, aderir a um leito de monocamada vascular ou plaquetária, conecte um segundo tubo a um tubo cônico de 50 mililitros contendo o tampão de ensaio e, em seguida, encha o tubo usando uma pipeta de 1 mililitro. Assim que a tubulação estiver cheia, aperte-a e conecte-a à câmara de fluxo. Antes de perfundir os leucócitos, adicione 3 milimolares de cloreto de cálcio e 2 milimolares de cloreto de magnésio à suspensão celular. Em seguida, incube as células a 37 graus Celsius por 5 minutos.

Para remover o possível ar preso na câmara e na tubulação, perfunda com tampão de ensaio antes de perfundir as células. Em seguida, aperte os tubos para fechar a extremidade e troque a tubulação do tampão de ensaio para a suspensão da célula, evitando assim bolhas de ar presas no interior.

Para que as primeiras células cheguem, perfunda as células na taxa de fluxo e tensão de cisalhamento apropriadas. Continue perfundindo as células, mantendo a taxa de fluxo e a tensão de cisalhamento por dois minutos. Em seguida, capture seis imagens das células rolantes e dissuasivas entre 2 a 6 minutos usando um microscópio de fluorescência com ampliação de 10 vezes conectado a uma câmera digital.

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Última atualização: 29 agosto 2026