$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Pegue uma placa de microtitulação e adicione diluições em série de novos peptídeos antimicrobianos ou AMPs - os compostos de teste.
Designe um subconjunto de poços como controles de crescimento e adicione água estéril sem os AMPs.
Adicione um fungo patogênico suspenso em meio de crescimento em poços selecionados.
Adicione apenas o meio, desprovido do fungo, em um subconjunto de poços designados como controles em branco.
Feche a placa e incube em condições úmidas propícias ao crescimento de fungos.
Após a incubação, observe os poços ao microscópio.
Os controles de crescimento parecem turvos devido ao crescimento fúngico na ausência de AMPs. A turbidez em todas as diluições de um AMP indica sua ineficácia contra o fungo.
Os controles em branco, desprovidos de crescimento de fungos, parecem claros. Compare os poços de teste com os controles em branco para confirmar a ausência de crescimento, indicando a atividade antifúngica dos AMPs.
A concentração mais baixa de um AMP que inibe o crescimento fúngico é denominada concentração inibitória mínima, ou CIM.
O ensaio antifúngico é realizado em triplicata em microplacas de poliestireno de 96 poços usando uma diluição serial de 2 vezes de cada peptídeo e antifúngico controle e um volume final de 50 microlitros por poço.
A etapa mais crucial do protocolo são as diluições em série. Portanto, tenha muito cuidado durante as próximas etapas para evitar qualquer erro que comprometa toda a sua análise.
Usando uma pipeta, adicione 100 microlitros do peptídeo antifúngico na concentração de força dupla da concentração final desejada mais alta nas colunas de um a três na linha A. Usando uma pipeta multicanal, adicione 50 microlitros de água estéril aos outros poços nas linhas B a H. Remova 50 microlitros dos poços com a concentração mais alta, transferir para os poços correspondentes da próxima concentração e homogeneizar pipetando para cima e para baixo várias vezes.
Repita a diluição seriada até atingir os poços com a menor concentração e descarte 50 microlitros desses poços. Deixe as colunas 11 e 12 das linhas A, B e C com apenas água para controles em branco ou controles de crescimento negativos. Adicionar 50 microlitros do inóculo ajustado de dupla intensidade em RPMI1640 meio a cada alvéolo das colunas 1 a 3 mais a coluna 11.
A concentração final para C. albicans será de 2.000 células por mililitro, e a concentração final para C. neoformans será de 10.000 células por mililitro. Prepare controles de crescimento negativos misturando 50 microlitros de água e 50 microlitros de inóculo ajustado sem o antifúngico. Prepare controles em branco combinando 50 microlitros de água e 50 microlitros de meio sem células.
Carregue os controles nos poços apropriados. Observe todos os poços usando um microscópio óptico invertido e, em seguida, incube as placas a 37 graus com agitação a 200 RPM. Após o período de incubação, observe todos os poços novamente para verificar mudanças na morfologia, bem como para verificar se há sinais de contaminação.