Um ensaio de microdiluição em caldo in vitro para a triagem de compostos antifúngicos

0 vistas3:48 min • July 8th, 2025

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Pegue uma placa de microtitulação e adicione diluições em série de novos peptídeos antimicrobianos ou AMPs - os compostos de teste.

Designe um subconjunto de poços como controles de crescimento e adicione água estéril sem os AMPs.

Adicione um fungo patogênico suspenso em meio de crescimento em poços selecionados.

Adicione apenas o meio, desprovido do fungo, em um subconjunto de poços designados como controles em branco.

Feche a placa e incube em condições úmidas propícias ao crescimento de fungos.

Após a incubação, observe os poços ao microscópio.

Os controles de crescimento parecem turvos devido ao crescimento fúngico na ausência de AMPs. A turbidez em todas as diluições de um AMP indica sua ineficácia contra o fungo.

Os controles em branco, desprovidos de crescimento de fungos, parecem claros. Compare os poços de teste com os controles em branco para confirmar a ausência de crescimento, indicando a atividade antifúngica dos AMPs.

A concentração mais baixa de um AMP que inibe o crescimento fúngico é denominada concentração inibitória mínima, ou CIM.

O ensaio antifúngico é realizado em triplicata em microplacas de poliestireno de 96 poços usando uma diluição serial de 2 vezes de cada peptídeo e antifúngico controle e um volume final de 50 microlitros por poço.

A etapa mais crucial do protocolo são as diluições em série. Portanto, tenha muito cuidado durante as próximas etapas para evitar qualquer erro que comprometa toda a sua análise.

Usando uma pipeta, adicione 100 microlitros do peptídeo antifúngico na concentração de força dupla da concentração final desejada mais alta nas colunas de um a três na linha A. Usando uma pipeta multicanal, adicione 50 microlitros de água estéril aos outros poços nas linhas B a H. Remova 50 microlitros dos poços com a concentração mais alta, transferir para os poços correspondentes da próxima concentração e homogeneizar pipetando para cima e para baixo várias vezes.

Repita a diluição seriada até atingir os poços com a menor concentração e descarte 50 microlitros desses poços. Deixe as colunas 11 e 12 das linhas A, B e C com apenas água para controles em branco ou controles de crescimento negativos. Adicionar 50 microlitros do inóculo ajustado de dupla intensidade em RPMI1640 meio a cada alvéolo das colunas 1 a 3 mais a coluna 11.

A concentração final para C. albicans será de 2.000 células por mililitro, e a concentração final para C. neoformans será de 10.000 células por mililitro. Prepare controles de crescimento negativos misturando 50 microlitros de água e 50 microlitros de inóculo ajustado sem o antifúngico. Prepare controles em branco combinando 50 microlitros de água e 50 microlitros de meio sem células.

Carregue os controles nos poços apropriados. Observe todos os poços usando um microscópio óptico invertido e, em seguida, incube as placas a 37 graus com agitação a 200 RPM. Após o período de incubação, observe todos os poços novamente para verificar mudanças na morfologia, bem como para verificar se há sinais de contaminação.

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Última atualização: 15 agosto 2026