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$$\longrightharp{xx}$$,
Comece com um tubo que transporta partículas ligadas à membrana derivadas de células denominadas vesículas extracelulares, ou EVs, que exibem composições antigênicas únicas.
Introduzir nanopartículas magnéticas, MNPs, contendo anticorpos de captura conjugados com fragmentos de Fab marcados com fluorescência.
Incubar para facilitar a interação entre as MNPs com antígenos específicos de EVs, formando complexos MNP-EV.
Adicione imunoglobulina-G para bloquear os locais de ligação Fc e, em seguida, introduza anticorpos de detecção marcados com fluorescência para corar outros antígenos nas partículas capturadas.
Colocar esta mistura numa coluna magnética pré-lavada colocada num separador magnético.
O campo magnético retém partículas capturadas por MNP dentro da coluna. Troque o tampão para remover anticorpos não ligados.
Recupere a coluna do separador magnético, elua as partículas capturadas por MNP com um tampão e fixe-as para preservar sua integridade estrutural.
Analise as partículas imunocapturadas por citometria de fluxo; sinais de fluorescência distintos de antígenos corados se correlacionam com características antigênicas únicas de EVs.
Comece combinando 60 microlitros de MNPs por condição e 5 microlitros de fragmentos Fab marcados específicos para o isotipo do anticorpo de captura de interesse em um tubo de microcentrífuga de 1,5 mililitro. Incubar a solução à temperatura ambiente durante 30 minutos com mistura contínua. Em seguida, pré-molhe um concentrador de 100k com 300 microlitros de PBS e gire o concentrador em uma microcentrífuga.
Ao final da centrifugação, purificar os complexos marcados em uma coluna de 100k, seguida de outra centrifugação, ressuspendendo o pellet em 200 microlitros de PBS fresco. Para capturar as partículas de interesse, incube os MNPs marcados com anticorpos com a partícula de interesse pelo período de incubação e temperatura apropriados.
Em seguida, bloqueie qualquer ligação FC não específica com a espécie apropriada de anticorpo IgG, vore suavemente e incube a solução de partículas por 3 a 5 minutos em temperatura ambiente. Em seguida, adicione a concentração recomendada pelo fabricante de cada anticorpo de detecção às partículas ou anticorpos de controle de isotipo à amostra de controle de isotipo por mais 20 minutos de incubação à temperatura ambiente.
Para separar as partículas capturadas pelo MNP do anticorpo não ligado, primeiro coloque uma coluna de separação magnética em um ímã separador e pré-umedeça a coluna com 500 microlitros de tampão de lavagem. Deixe o tampão de lavagem fluir através da coluna. Em seguida, adicione os complexos de partículas MNP à coluna, coletando o fluxo em um recipiente de resíduos.
Quando toda a solução complexa tiver passado pela coluna, lave a coluna três vezes com 500 microlitros de tampão de lavagem. Em seguida, transfira a coluna para um tubo de 12 por 75 milímetros. Após três minutos, adicione 200 microlitros de PBS, permitindo que as contas eluam por gravidade.
Quando todo o PBS tiver passado pela coluna, adicione 200 microlitros de PBS fresco ao tubo e fixe as partículas com 200 microlitros de paraformaldeído a 4%. Em seguida, carregue o PBS filtrado por 0,22 mícron em um citômetro de fluxo e ajuste a tensão PMT no citômetro até que o PBS filtrado mostre zero a muito poucos eventos. Em seguida, execute as partículas capturadas pelo MNP usando um fluxo baixo com um filtro em linha de 0,04 mícron para fluido de bainha colocado em série atrás do filtro de bainha padrão de 0,2 mícron para eliminar ainda mais quaisquer eventos falsos.