JoVE Encyclopedia of Experiments
Imunologia
0 vistas • 5:54 min • July 8th, 2025
Pegue o tecido pulmonar murino picado em um tampão de digestão e incube a uma temperatura fisiológica.
As enzimas tampão quebram a matriz do tecido, soltando as células.
Triturar para dissociar a massa celular e filtrar a suspensão usando um filtro para isolar as células individuais.
Centrifugue para remover o sobrenadante com restos de tecido. Incube as células com um tampão de lise para lisar os glóbulos vermelhos.
Centrifugue para descartar o sobrenadante contendo detritos celulares. Ressuspenda as células e transfira-as para uma microplaca.
Adicione anticorpos para bloquear os receptores Fc, evitando manchas de fundo.
Introduza um coquetel de anticorpos marcado com fluoróforo visando marcadores de superfície específicos nas células imunes inatas - monócitos, macrófagos, células dendríticas, células assassinas naturais, neutrófilos, eosinófilos e células imunes adaptativas - linfócitos B e T.
Fixe e permeabilize as células. Adicione anticorpos marcados com fluoróforo específicos para um marcador intracelular em monócitos, macrófagos, células dendríticas e eosinófilos.
Usando citometria de fluxo, classifique as células imunes marcadas.
Transfira o pulmão para uma placa de Petri. Pique-o usando dois bisturis finos e, em seguida, coloque-o em um tubo cônico de 50 mililitros. Adicione 5 mililitros de tampão de digestão para lavar o prato. Prenda a tampa do tubo e digere o pulmão por 30 minutos em um agitador orbital a uma velocidade de 150 rotações por minuto a 37 graus Celsius. Pare a reação adicionando 10 mililitros de tampão BSA frio.
Após a digestão, misture e dissolva os pedaços de pulmão usando uma agulha de calibre 18. Coloque um filtro de filtro de 70 micrômetros em cima de um novo tubo cônico de 50 mililitros e transfira a mistura pulmonar digerida para o filtro.
Use o lado de borracha de um êmbolo de seringa de 10 mililitros para esmagar os pedaços de pulmão restantes no filtro e lave-o com tampão BSA. Centrifugar a suspensão monocelular a 350 g durante 8 minutos a 7 graus Celsius. Descarte o sobrenadante e ressuspenda as células em 1 mililitro de tampão de lise ACK. Misture a suspensão usando uma pipeta de 1 mililitro e incube-a por 90 segundos em temperatura ambiente.
Adicione 10 mililitros de tampão BSA frio à mistura de reação e centrifugue a 350 g por 7 minutos a 4 graus Celsius. Descarte o sobrenadante. Ressuspenda o pellet no tampão de coloração e conte as células usando um hemocitômetro. Ressuspenda as células a uma concentração de 5 milhões de células por mililitro para coloração superficial.
Transfira 1 milhão de células em 200 microlitros por poço para uma placa de 96 poços e centrifugue a placa a 350 g por 7 minutos a 4 graus Celsius. Preparar uma solução em bloco de citometria de fluxo diluindo o anticorpo anti-16/32 em tampão de coloração.
Ressuspender as células em 50 microlitros da solução em bloco de citometria de fluxo. Incube a suspensão por 15 a 20 minutos a 4 graus Celsius ou no gelo. Em seguida, adicione 150 microlitros de tampão de coloração à placa e centrifugue a 350 g por 5 minutos a 4 graus Celsius.
Prepare a solução de anticorpos de superfície diluindo os anticorpos de superfície no tampão de coloração. Ressuspenda as células em 50 microlitros da solução de anticorpo de superfície e incube a placa a 4 graus Celsius no escuro. Em seguida, lave as células duas vezes com tampão de coloração.
Prepare o tampão de fixação e permeabilização misturando três partes de diluente de fixação e permeabilização e uma parte de tampão de coloração. Ressuspenda as células em 50 microlitros do tampão pré-preparado por poço da placa de 96 poços e incube-as por 20 a 25 minutos a 4 graus Celsius no escuro.
Dilua o tampão de permeabilização com água deionizada purificada para preparar um tampão de permeabilização e use-o para lavar as células. Preparar uma solução de anticorpos intracelulares diluindo com 1 mililitro de tampão de permeabilização. Ressuspenda as células em 50 microlitros da solução diluída de anticorpos intracelulares por poço da placa de 96 poços e incube por 40 minutos a 4 graus Celsius no escuro.
Lave as células com tampão de permeabilização e, em seguida, com tampão de coloração. Após a lavagem final, ressuspenda as células em 200 microlitros de tampão de coloração. Adquira um mínimo de 1,5 milhão de células por amostra no citômetro de fluxo.
Este artigo detalha um protocolo para o isolamento e análise de células imunes de tecido pulmonar murino utilizando citometria de fluxo. O método envolve digestão do tecido, lise celular e marcação com anticorpos específicos para identificar diversos tipos de células imunes.
Este método permite que equipes de P&D biofarmacêutica perfilhem quantitativamente populações de células imunes inatas e adaptativas em pulmões de camundongos, apoiando a validação de alvos e a redução de riscos mecanicistas em programas de imunologia e doenças respiratórias. Ao fornecer suspensões de células únicas prontas para citometria de fluxo e reprodutíveis, aumenta a confiança preditiva em modelos pré-clínicos e orienta decisões de avanço ou interrupção para candidatos terapêuticos que modulam a imunidade pulmonar. O protocolo posiciona o fenotipagem imune como uma capacidade escalável e reutilizável em todo o descobrimento e fluxos de trabalho translacionais.
O método se insere no continuum de descoberta, desde a validação do alvo até a identificação de compostos líderes e a avaliação pré-clínica, fornecendo contexto imunológico para a atividade do composto no tecido pulmonar.
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Última atualização: 22 agosto 2026