Um método de imunofluorescência para medir a neutralização do citomegalovírus humano

0 vistas4:05 min • December 23rd, 2025

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Tome diluições seriadas de anticorpos específicos para citomegalovírus humano, ou HCMV.

Ao adicionar o HCMV, os anticorpos se ligam à glicoproteína B no envelope viral, neutralizando o vírus.

Transfira a mistura para fibroblastos humanos e incuba.

Um complexo de glicoproteína trímera nos vírus não neutralizados se liga a receptores celulares específicos, desencadeando a fusão da membrana vírus-hospedeiro mediada pela glicoproteína B e liberando o nucleocapsídeo contendo DNA genômico em seu interior.

O genoma liberado entra no núcleo, codificando proteínas localizadas no núcleo imediatamente cedo, ou IE.

A neutralização de anticorpos impede a entrada viral nas células.

Remova os vírus não internalizados. Trate com etanol a uma temperatura abaixo de zero para fixar e permeabilizar as células.

Introduza um anticorpo primário que se liga às proteínas IE.

Adicione um anticorpo secundário conjugado com fluoróforo que se liga ao anticorpo primário e uma coloração fluorescente que se liga ao DNA.

Sob um microscópio, detecte células com coloração dupla infectadas por vírus. Calcule a porcentagem de células infectadas para determinar a neutralização do vírus nas diferentes concentrações de anticorpos.

No dia anterior ao experimento, prepare as células-alvo para infecção cultivando células de fibroblastos, cultivadas em meio completo, consistindo de DMEM suplementado com 10% de FBS, em uma placa estéril de 96 poços.

Após 24 horas, prepare a mistura vírus-anticorpo adicionando 90 microlitros de solução diluída de anticorpos nos poços de uma placa nova de 96 poços. Preparar diluições seriadas da solução de anticorpos utilizando meios completos.

Além disso, adicione 60 microlitros da solução do vírus, pré-diluída em meio completo, em cada poço contendo anticorpos para gerar várias concentrações das misturas vírus-anticorpo e incubar.

Agora, para infectar as células-alvo, pegue a placa semeada com fibroblastos. Adicione 100 microlitros de diferentes concentrações da mistura vírus-anticorpo às células e incube a placa-alvo por 24 horas.

Após 24 horas, para detectar a infecção viral por imunofluorescência, fixe as células com etanol absoluto e incube-as em freezer a -20 graus Celsius. Após a fixação, prossiga com as etapas subsequentes na bancada do laboratório.

Pipetar 100 μl do anticorpo primário para todos os alvéolos da placa. Coloque o prato em temperatura ambiente por uma hora.

Remova a solução de anticorpos primários dos poços. Adicione uma mistura de anticorpo secundário conjugado com fluoróforo e solução DAPI a todos os poços. Incube o prato por uma hora no escuro e lave o prato.

Para quantificar a infecção, visualize a placa ao microscópio e adquira imagens usando os canais azul e vermelho. Calcule a porcentagem de infecção por poço, conforme detalhado no protocolo de texto.

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Última atualização: 1 agosto 2026