Avaliação da clivagem mediada por caspase de proteínas virais e hospedeiras em células infectadas por vírus

0 vistas3:34 min • July 8th, 2025

Comece com células de mamíferos infectadas por vírus que produzem várias caspases, incluindo caspase-3.

Adicione um meio de crescimento ao poço de controle e um meio suplementado com inibidor de caspase-3 ao poço de teste.

No poço de controle, a caspase-3 reconhece e degrada as nucleoproteínas virais e as proteínas do hospedeiro essenciais para a propagação viral.

No poço de teste, o inibidor entra na célula, inibindo a atividade da caspase-3 e impedindo a degradação da proteína.

Desalojar as células da placa. Adicione um reagente de lise e aqueça para induzir a lise celular, liberando proteínas intracelulares.

Carregue ambas as amostras em um gel de poliacrilamida SDS e eletroforese para separar as proteínas com base no tamanho.

Após a eletroforese, transfira o gel para uma membrana de borrão.

Trate a membrana com anticorpos primários contra nucleoproteínas virais e proteínas do hospedeiro.

Lave e cubra com anticorpos secundários conjugados com fluoróforo ligando-se a anticorpos primários, gerando bandas fluorescentes.

A fluorescência mais alta na amostra de teste indica clivagem viral e proteica do hospedeiro mediada pela caspase-3 reduzida em comparação com o controle.

Para começar, semeie células MDCK ou A549 em uma placa de cultura de células de 12 poços, incube as células durante a noite a 37 graus Celsius sob uma atmosfera de 5% de dióxido de carbono. No dia seguinte, remova o meio de cultura antigo das células e lave as células em cada poço duas vezes com 1 mililitro de MEM sem soro.

Em seguida, infecte as células adicionando 400 microlitros de inóculo do vírus influenza A e coloque a placa para incubação por uma hora. Após a incubação, remova o inóculo do vírus e lave as células com MEM. Adicione 1 mililitro de MEM sem soro a cada poço e incube as células conforme mostrado na etapa anterior.

Após 24 horas, colha as células raspando-as com um êmbolo de seringa de 1 mililitro e transfira-as para um tubo de 1,5 mililitro. Centrifugar o tubo a 12.000 g durante dois minutos à temperatura ambiente e recolher o sobrenadante. Lave o pellet celular com 250 microlitros de solução salina tamponada com fosfato e centrifugue. Remova o sobrenadante e adicione 100 microlitros de tampão de lise celular. Misture por vórtice.

Aqueça o tubo a 98 graus Celsius por 10 minutos para lisar completamente as células. Em seguida, resolva quantidades iguais de proteína de amostras não infectadas e infectadas por eletroforese em gel de poliacrilamida SDS padrão. Após a eletroforese, transfira o gel de proteína para uma membrana de nitrocelulose ou PVDF e execute o western blotting. Compare os níveis de proteína nas pistas de amostra infectadas tratadas com simulador e tratadas com inibidor.

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Última atualização: 29 agosto 2026