Diferenciando células-tronco pluripotentes induzidas por humanos em neurônios em matrizes de microeletrodos

0 vistas4:33 min • July 8th, 2025

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Tome células-tronco pluripotentes induzidas por humanos transduzidas ou hiPSCs, superexpressando neurogenina-2, impulsionadas pelo sistema induzível por doxiciclina antibiótica.

Transfira-os para as áreas de eletrodos ativos revestidos com proteínas de adesão nos poços de uma matriz de microeletrodos de vários poços.

Permita que os hiPSCs se fixem nas áreas dos eletrodos ativos revestidos.

Adicione meios suplementados com doxiciclina, que induz a superexpressão da neurogenina-2, um fator de transcrição específico para neurais.

A neurogenina-2 desencadeia vias moleculares e leva à diferenciação de hiPSC em células precursoras neurais, enquanto os constituintes do meio auxiliam na sobrevivência celular.

Introduza astrócitos nos poços de matriz de microeletrodos, onde eles aderem à área ativa do eletrodo.

Substitua o meio por meio neurobasal contendo fatores de crescimento neurogênicos, doxiciclina e um inibidor de crescimento celular.

O inibidor previne a proliferação de astrócitos e elimina hiPSCs indiferenciados.

Com o tempo, a expressão sustentada da neurogenina-2 e os fatores de crescimento impulsionam a diferenciação das células precursoras neurais em neurônios.

Além disso, substitua o meio por meio neurobasal contendo soro para a sobrevivência dos astrócitos.

Os astrócitos secretam fatores de crescimento que promovem a maturação dos neurônios e a formação de sinapses, formando uma rede neuronal.

Para os MEAs de seis poços, dilua as células para obter uma suspensão celular de 7,5 x 105 células por mililitro. Aspire a laminina diluída dos MEAs de seis poços. Para os MEAs de seis poços, coloque as células em placas adicionando 100 microlitros de suspensão celular à área do eletrodo ativo em cada poço.

Em seguida, coloque os MEAs de seis poços em uma incubadora umidificada a 37 graus Celsius. Após duas horas, adicione cuidadosamente 500 microlitros do meio E8 preparado a cada poço dos MEAs de seis poços. Posteriormente, coloque os MEAs de seis poços durante a noite em uma incubadora umidificada de 37 graus Celsius.

No terceiro dia, aqueça 0,05% de tripsina-EDTA à temperatura ambiente. Aqueça a DPBS em DMEM/F-12 com penicilina-estreptomicina a 1% a 37 graus Celsius. Em seguida, aspire o meio gasto da cultura de astrócitos de ratos. Lave a cultura adicionando 5 mililitros de DPBS e agite-a suavemente.

Em seguida, aspire o DPBS e adicione 5 mililitros de tripsina-EDTA a 0,05%. Agite a tripsina-EDTA suavemente. Em seguida, incube as células em uma incubadora umidificada a 37 graus Celsius por 5 a 10 minutos. Em seguida, verifique ao microscópio se as células estão separadas.

Separe as últimas células batendo no frasco algumas vezes. Em seguida, adicione 5 mililitros de DMEM/F-12 ao balão. Triturar as células suavemente dentro do frasco com uma pipeta de 10 mililitros. Em seguida, colete a suspensão celular em um tubo de 15 mililitros. Girar o tubo a 200 vezes g durante oito minutos.

Em seguida, aspirar o sobrenadante e ressuspender as células em 1 mililitro de DMEM/F-12. Determine o número de células por mililitro usando um hemocitômetro.

Em seguida, adicione 7,5 x 104 astrócitos a cada poço dos MEAs de seis poços e adicione 2 x 104 astrócitos a cada poço da placa de 24 poços. Incube as células durante a noite em uma incubadora umidificada a 37 graus Celsius.

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Última atualização: 15 agosto 2026