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Comece com monofosfato de adenosina cíclico, ou cAMP, uma molécula de sinalização que regula várias funções celulares. Adicione cAMP a uma co-cultura neurônio-macrófago.
As moléculas de cAMP do meio e os fatores de crescimento dos neurônios desencadeiam a ativação dos macrófagos.
Transferir a inserção com macrófagos ativados para outro alvéolo que contenha um meio de cultura de macrófagos.
Aqui, os macrófagos liberam citocinas e quimiocinas no meio, formando um meio condicionado ou CM.
Centrifugue o CM para pellet os componentes celulares.
Transfira o sobrenadante e o filtro para remover os detritos celulares.
Adicione o CM coletado a uma cultura neuronal. As citocinas e quimiocinas no MC coletado promovem as extensões dos neurônios.
Adicione paraformaldeído resfriado para fixar as células.
Adicione um tampão de bloqueio para evitar a ligação inespecífica de anticorpos. Lave para remover o tampão residual.
Aplique anticorpos primários que têm como alvo as proteínas do citoesqueleto dos neurônios. Lave para remover anticorpos não ligados.
Adicione anticorpos secundários conjugados com fluoróforo vermelho que se ligam aos anticorpos primários. Lave para remover anticorpos não ligados.
Usando microscopia de fluorescência, visualize os neurônios de cor vermelha com extensões.
Quatro horas após o neurônio macrófago ter sido co-cultivado, adicione 2 microlitros de solução de 100 micromolares db-cAMP às co-culturas de neurônios macrófagos. Após 24 horas, encha um poço vazio com 1 mililitro de meio de cultura de macrófagos na mesma placa de 6 poços.
Transfira a inserção da cultura celular na co-cultura de neurônios macrófagos para o poço vazio com meio de cultura de macrófagos. Após 72 horas, centrifugar o meio condicionado por macrófagos a 239 g durante cinco minutos para remover os componentes celulares. Passe o sobrenadante por um filtro de 0,2 micrômetro para remover quaisquer detritos celulares restantes.
Neste procedimento, pré-cubra uma lâmina de câmara de 8 poços com poli D-lisina e laminina. Em seguida, obtenha os neurônios DRG adultos associados em meio neurobasal, suplementados com B 27. Placa 5 x 104 células por poço em uma lâmina de câmara pré-revestida de 8 poços.
Em seguida, coloque a lâmina da câmara em uma incubadora de 37 graus Celsius por duas horas, permitindo que as células se prendam ao fundo. Em seguida, substitua o meio de cultura por um meio condicionado descongelado que é pré-aquecido a 37 graus Celsius. 15 horas após o plaqueamento inicial, remova o meio e lave as células com PBS uma vez.
Em seguida, adicione 200 microlitros de solução gelada de paraformaldeído a 4% aos poços e incube as células com a solução de paraformaldeído por 20 minutos a 4 graus Celsius. Em seguida, incubar as células fixadas com solução de anticorpo primário, diluída com soro de cabra normal a 10% por quatro horas em temperatura ambiente ou durante a noite a 4 graus Celsius. Depois, tire imagens usando um microscópio de fluorescência para visualizar o crescimento de neuritos.