Geração de células semelhantes a células de Schwann a partir de células estromais da medula óssea

0 vistas3:58 min • July 8th, 2025

Comece com uma cultura aderente de células estromais da medula óssea.

Sujeitar as células à hipóxia, uma condição caracterizada por níveis reduzidos de oxigênio, por um período necessário.

Isole as células pré-condicionadas por hipóxia, centrifugue e remova o sobrenadante. Ressuspenda as células em meios progenitores neuronais contendo fatores de crescimento neuronal.

Transfira as células para uma placa de cultura de baixa fixação e incuba.

O pré-condicionamento da hipóxia e os fatores de crescimento neuronal induzem a diferenciação de células estromais em progenitores neuronais.

A superfície da placa de baixa fixação mantém os progenitores em suspensão, facilitando sua proliferação e agregação em neuroesferas tridimensionais.

Colha as neuroesferas, centrifugue e remova o sobrenadante. Ressuspenda as células em meios de indução glial contendo fatores de crescimento específicos da glia.

Transfira as neuroesferas para uma placa de cultura revestida com laminina, um componente da matriz extracelular, e poli-D-lisina, um polímero sintético carregado positivamente.

A superfície revestida promove a adesão celular, facilitando a fixação da neuroesfera.

Os fatores de crescimento específicos da glia estimulam a diferenciação do progenitor neuronal em células semelhantes a células de Schwann que exibem a morfologia cônica característica das células de Schwann.

Para pré-condicionamento hipóxico, primeiro solte a braçadeira do anel e limpe as partes expostas com etanol a 70%. Além disso, desmonte a câmara de hipóxia em componentes e coloque-os em uma capela de fluxo laminar para esterilização sob luz ultravioleta por 15 minutos.

Em seguida, lave uma cultura de MSC confluente de 80% a 90% com 10 mililitros de PBS, conforme demonstrado, e trate as culturas com meio de crescimento MSC fresco suplementado com HEPES 25 milimolares. Coloque a cultura tratada na câmara de hipóxia remontada e aperte o anel clamp. Sele as extremidades de conexão da câmara para garantir que não haja vazamento de gás e lave uma mistura de gases de 99% de nitrogênio e 1% de oxigênio na câmara a uma taxa de fluxo de 10 litros por minuto.

Após cinco minutos, colocar a câmara na incubadora de cultura de células durante 16 horas. Na manhã seguinte, retire as células como acabamos de demonstrar e colete-as por centrifugação. Ressuspenda o pellet em meio progenitor neural e semeie 6 x 103 células por centímetro quadrado em placas de seis poços de baixa fixação para sua cultura a 37 graus Celsius e 5% de CO2 por 12 dias.

Esferas de células não aderentes consideráveis devem ser observadas nos dias 6 a 7, com mais neuroesferas aparentes em culturas condicionadas por hipóxia do que aquelas sob normóxia nos dias 10 a 12. No dia 12, use uma pipeta de 10 mililitros para transferir as neuroesferas para um tubo cônico de 15 mililitros e colete as neuroesferas por centrifugação.

Ressuspenda as esferas em DMEM/F12 e coloque 5 a 10 neuroesferas por centímetro quadrado em placas de seis poços revestidas com lamina de poli-D-lisina em 1,5 mililitros de meio de indução glial por poço. Manter a cultura de células esféricas durante, pelo menos, sete dias, refrescando o meio de três em três dias.

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Última atualização: 29 agosto 2026